Thay Thế Bột Cá Bằng Bột Hạt Dầu Mè Jatropha curcas Ảnh Hưởng Đến Hiệu Suất Tăng Trưởng Và Thành Phần Cơ Thể Của Tôm Thẻ Chân Trắng (Litopenaeus Vannamei)

Tóm tắt

Jatropha curcas (L.) là cây đa năng, chịu hạn, phân bố rộng rãi ở vùng nhiệt đới và cận nhiệt đới. Hạt Jatropha chứa nhiều dầu và protein (600-660 g/ kg protein thô, tương tự bột cá), được xem là nguồn nguyên liệu sinh học tiềm năng. Bột hạt Jatropha sau khi chiết xuất dầu là nguồn cung cấp protein dồi dào, tuy nhiên việc sử dụng trong thức ăn cho cá và tôm còn hạn chế do các thành phần độc hại và kháng dinh dưỡng. Nghiên cứu kéo dài 8 tuần được thực hiện để đánh giá giá trị dinh dưỡng của bột hạt Jatropha khử độc (DJKM) cho tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei). 60 con tôm có trọng lượng trung bình 4,46 ± 0,64 g được chia thành 3 nhóm, mỗi nhóm 4 lần lặp lại, và cho ăn khẩu phần ăn đẳng nitơ và đẳng năng lượng (protein thô 350 g/ kg, lipid thô 90 g/ kg): Đối chứng (protein từ bột cá), JC25 và JC50 (25% và 50% protein bột cá được thay thế bằng DJKM). Kết quả cho thấy tôm ăn DJKM có tốc độ tăng trưởng cao hơn (P < 0,05) so với nhóm đối chứng. Tỷ lệ chuyển đổi thức ăn thấp hơn (P > 0,05) ở nhóm DJKM, nhưng tỷ lệ hiệu quả sử dụng protein cao hơn. Hàm lượng protein, tro và năng lượng trong cơ thể tôm cao hơn (P < 0,05) ở nhóm DJKM. Độ ẩm và hàm lượng lipid trong toàn bộ cơ thể tôm không khác biệt đáng kể giữa ba nhóm. Nồng độ cholesterol hemolymp cao nhất ở nhóm đối chứng, thấp nhất ở nhóm JC50. Tóm lại, Bột hạt Jatropha khử độc là nguồn thay thế đầy hứa hẹn cho bột cá trong khẩu phần ăn của tôm thẻ chân trắng.

Giới thiệu

Nuôi tôm thâm canh ngày càng phổ biến, dẫn đến nhu cầu cấp thiết về các nguồn protein thay thế cho bột cá (FM). Nhu cầu về FM dự kiến sẽ vượt xa nguồn cung vào năm 2050 do sản lượng cá đánh bắt trì trệ và tốc độ tăng trưởng nhanh chóng của ngành nuôi trồng thủy sản. Do đó, cần nghiên cứu và sử dụng các nguồn protein thay thế tiết kiệm hơn với giá trị dinh dưỡng tương đương FM.

Jatropha curcas (Hạt vật lý) là một loại cây được quan tâm trong việc tìm kiếm nguồn nhiên liệu lỏng tái tạo. Hạt Jatropha chứa nhiều dầu (25-35%) có thể được sử dụng làm nhiên liệu sinh học. Bột hạt Jatropha sau khi khử độc có hàm lượng protein thô cao (600-660 g/ kg) và cân bằng axit amin tốt, thậm chí cao hơn so với bột đậu nành. Tuy nhiên, việc sử dụng bột hạt Jatropha ban đầu còn hạn chế do độc tính của nó, chủ yếu do este phorbol (PE) và các yếu tố kháng dinh dưỡng như chất ức chế trypsin, lectin và phytate. Gần đây, một quy trình khử độc hiệu quả đã được phát triển, giúp bột hạt Jatropha trở nên an toàn và phù hợp cho thức ăn chăn nuôi, mở ra tiềm năng thay thế FM trong thức ăn cho tôm. Sự phát triển mới này mang đến nhiều cơ hội sử dụng bột hạt đã được khử độc trong dinh dưỡng động vật, bao gồm cả việc thay thế FM trong thức ăn cho tôm.

Nghiên cứu trước đây của chúng tôi (Kumar và cộng sự 2010a,b,c,d) đã chứng minh rằng bột hạt Jatropha khử độc (DJKM) là nguồn protein chất lượng cao cho cá chép và cá hồi. Nghiên cứu này nhằm đánh giá tiềm năng sử dụng DJKM thay thế cho bột cá (FM) trong thức ăn cho tôm. Tốc độ tăng trưởng và sử dụng chất dinh dưỡng ở tôm được cho ăn khẩu phần ăn thay thế 25 và 50% protein FM bằng bột hạt đã được giải độc đã được báo cáo.

Chuẩn bị nghiên cứu

Hạt Jatropha được mua từ Ấn Độ và được tách vỏ và khử mỡ ở Đức. Các dung môi hữu cơ được sử dụng để khử độc bột hạt Jatropha đã khử chất béo (đã nộp đơn xin cấp bằng sáng chế cho quá trình khử độc, Makkar & Becker 2010). Sau khi loại bỏ PE, bữa ăn được hấp khử trùng (121℃ trong 15 phút) để khử hoạt tính các chất kháng dinh dưỡng không bền với nhiệt, chất ức chế trypsin và lectin.

Ba khẩu phần ăn được xây dựng có chứa 350 g/kg protein thô và 90 g/kg lipid. Mức độ bao gồm của DJKM như sau: Khẩu phần ăn đối chứng được chuẩn bị với FM là nguồn protein, không có bất kỳ DJKM nào; và đối với khẩu phần ăn JC25 và JC50, 25% và 50% protein FM lần lượt được thay thế bằng DJKM. Hỗn hợp cuối cùng của mỗi khẩu phần được chế biến thành các viên ẩm có đường kính 3 mm (sử dụng Bosch, Loại UM60ST 2-M, Robert Bosch Hausgera¨t GmbH, 70839 Gerlingen, Đức) và sau đó sấy khô trong lò ở nhiệt độ 40℃ qua đêm. Thành phần của khẩu phần thí nghiệm được liệt kê trong Bảng 1.

Bảng 1 Thành phần khẩu phần thí nghiệm (g/ kg thức ăn) cho tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei).

¹ Vereinigte Fischmehlwerke Cuxhaven GmbH & Co. KG, Cuxhaven, Đức.

² Cerestar, Deutchland GmbH, Zu¨ lpich, Đức.

³ Sigma-Aldrich Chemie, Batch (104K0016), GmbH, Steinheim, Đức.

⁴ Lô 109H0196, Lô (104K0016), Sigma-Aldrich Chemie, GmbH, Steinheim, Đức.

⁵ Thomy, Nestle Deutschland AG, 41415 Neuss; Reg. Thương hiệu của Societe des Produits Nestle S.A. Đức.

⁶ Menhaden, lô #102k0126, Sigma-Aldrich, Chemie GmbH Steinheim, Đức.

⁷Altromin Spezialfutter GmbH & Co. KG, Lage, Đức.

⁸ Hỗn hợp vitamin (g hoặc IU/ kg trộn sẵn): retinol palmitate, 500000IU; thiamine, 5; riboflavin, 5; niacin, 25; axit folic, 1; pyridoxine, 5; cyanocobalamin, 5; axit ascorbic, 10; cholecalciferol; 50000 IU; a-tocopherol, 2,5; menadione, 2; inositol, 25; axit pantothenic, 10; choline clorua,100; biotin, 0,25.

⁹ Premix khoáng (g/ kg): CaCO₃, 336; KH₂PO₄, 502; MgSO₄. 7H₂O, 162; NaCl, 49,8; Fe(II) gluconate, 10,9; MnSO₄. H₂O, 3,12; ZnSO₄. 7H₂O, 4,67; CuSO₄. 5H₂O, 0,62; KI, 0,16; CoCl₂. 6H₂O, 0,08; amoni molybdat, 0,06; NaSeO₃, 0,02.

Tôm con Litopenaeus vannamei (2–4 g) được lấy từ trang trại nuôi trồng thủy sản phía bắc nước Đức EAP (Sản xuất nuôi trồng thủy sản sinh thái AG) ở Strande/Kiel Đức. 60 con tôm giống được phân ngẫu nhiên thành ba nhóm, mỗi nhóm có bốn bể. Mỗi bể chứa năm con tôm (trọng lượng trung bình 4,46 ± 0,65 g) và có dung tích 45 L. Tất cả các bể đều được cung cấp nước từ hệ thống tuần hoàn. Hệ thống này có chu kỳ quang học gồm 12 giờ sáng: 12 giờ tối. Chất lượng nước được theo dõi trong suốt thí nghiệm. Tất cả các thông số nước đều nằm trong phạm vi tối ưu (nhiệt độ 26,2–27,5℃, độ mặn 16–19‰, pH 7,0–7,5, oxy hòa tan 6,9–7,4 mg/L, tổng NH₃ 0,1–0,2 mg/L, nitrit 0,07–0,1 mg/L và nitrat 1–3 mg/L). Lưu lượng nước được điều chỉnh để giữ độ bão hòa oxy trên 80%. Tôm được nhịn ăn một ngày trước khi bắt đầu thí nghiệm. Trong thời gian thử nghiệm, tôm được cho ăn khẩu phần 5% sinh khối động vật mỗi ngày, chia thành 5 bữa. Hai trong số các bữa ăn được cho vào ban đêm để phù hợp với hành vi kiếm ăn tự nhiên của tôm.

Tỷ lệ sống được tính bằng công thức sau:

Tỉ lệ sống (%) = (Số tôm cuối thí nghiệm/Số tôm thả ban đầu) x 100

Sau 8 tuần, thí nghiệm kết thúc và tôm được thu hoạch. Tôm được gây mê bằng tricaine metansulfonate (MS222) ở nồng độ 250 ppm trong nước. Hemolymp được lấy từ hai con tôm của mỗi nhóm và ly tâm để thu được hemolymp. Hemolymp được bảo quản ở -20°C để xác định cholesterol. Tôm được bảo quản ở 20℃ để phân tích thành phần hóa học. Trước khi xác định thành phần dinh dưỡng, tôm được hấp khử trùng ở 121°C trong 20 phút, đồng nhất hóa hoàn toàn bằng Ultra-Turrax T25, đông lạnh qua đêm và sau đó đông khô.

Este phorbol (PE) được xác định theo phương pháp của Makkar và cộng sự (2007). Giới hạn phát hiện của PE là 3 µg/g. Hoạt tính ức chế trypsin được xác định theo phương pháp của Smith và cộng sự (1980). Hàm lượng lectin được phân tích bằng xét nghiệm ngưng kết hồng cầu theo Makkar và cộng sự (1997). Hoạt tính ngưng kết máu được biểu thị bằng lượng vật liệu tối thiểu (mg/ mL môi trường xét nghiệm) tạo ra sự ngưng kết. Lượng tối thiểu là lượng vật liệu/ mL môi trường xét nghiệm ở độ pha loãng cao nhất dương tính với hiện tượng ngưng kết; giá trị này càng thấp thì hoạt động của lectin càng cao. Hàm lượng phytate được xác định bằng phương pháp đo quang phổ theo Vaintraub & Lapteva (1988). Kết quả được biểu thị bằng g axit phytic trên 100 g vật liệu sử dụng muối natri của axit phytic (Sigma, St Louis, MO, USA) làm tiêu chuẩn. Polysacarit không tinh bột (NSP) được ước tính theo Englyst và cộng sự (1994). Thành phần axit amin của bột cá (FM) và bột hạt Jatropha khử độc (DJKM) được xác định bằng máy phân tích axit amin tự động sau khi thủy phân mẫu bằng HCl 6 M ở 110℃ trong 24 giờ (Bassler & Buchholz 1993). Các axit amin chứa lưu huỳnh được oxy hóa bằng axit performanceic trước khi thủy phân bằng axit. Hàm lượng tryptophan của các mẫu nói trên được xác định bằng phương pháp quang phổ của PinterSzakacs & Molnar-Perl (1990).

Hàm lượng dinh dưỡng của các thành phần thức ăn, thức ăn và toàn bộ cơ thể tôm được xác định theo phương pháp tiêu chuẩn của AOAC (1990). Các mẫu được phân tích về chất khô, tro, protein thô và lipid (lipid hòa tan trong ether). Tổng năng lượng của các thành phần khẩu phần, khẩu phần và cơ thể tôm được xác định bằng máy đo nhiệt lượng bom (IKA C7000) sử dụng axit benzoic làm chất chuẩn.

Cholesterol trong hemolymp được xác định bằng bộ dụng cụ so màu enzyme: Hệ thống chẩn đoán Hitado, Nobiflow cholesterin. Cường độ màu được xác định bằng trắc quang và tỷ lệ thuận với nồng độ cholesterol trong mẫu hemolymp.

Lượng ăn vào: Thức ăn được cung cấp được sử dụng làm lượng thức ăn ăn vào vì không quan sát thấy thức ăn thừa. Tổn thất do rửa trôi được coi là không đáng kể.

Hiệu suất tăng trưởng và sử dụng chất dinh dưỡng được đánh giá dựa trên mức tăng khối lượng cơ thể (BMG), tốc độ tăng trưởng cụ thể (SGR, % ngày), tốc độ tăng trưởng trao đổi chất (MGR, g kg0,8 ngày), tỷ lệ chuyển đổi thức ăn (FCR) và tỷ lệ hiệu quả protein (PER).

BMG (%) = [(Khối lượng cơ thể cuối cùng–khối lượng cơ thể ban đầu)/Khối lượng cơ thể ban đầu] x 100; SGR (%/ ngày) = [(ln khối lượng cơ thể cuối cùng tính bằng g) – ln khối lượng cơ thể ban đầu tính bằng g)/số ngày thử nghiệm] x 100; MGR (g kg^0,8 ngày ) = (Khối lượng cơ thể tăng lên tính bằng g)/[{(khối lượng cơ thể ban đầu tính bằng g/1000)^{^0,8} + (khối lượng cơ thể cuối cùng tính bằng g/1000)^{^0,8}}/2]/ số ngày dùng thử; FCR = tăng khối lượng cơ thể (g)/tăng khối lượng cơ thể (g) và PER = tăng khối lượng cơ thể (g)/protein thô khi cho ăn (g).

Phân tích thống kê

Tất cả dữ liệu đều được phân tích phương sai một chiều (ANOVA) và tầm quan trọng của sự khác biệt giữa các phương tiện đã được kiểm tra bằng thử nghiệm Tukey HSD (P <0,05). Phần mềm được sử dụng là Statistica 7.0 (Statsoft, Inc. 1984–2004, Tulsa, OK, USA). Các giá trị được biểu thị bằng giá trị trung bình ± SD.

Kết quả và thảo luận

Hợp chất độc hại ̣(phorbol este), chất kháng dinh dưỡng, thành phần dinh dưỡng và axit amin

Hàm lượng este phorbol trong bột hạt Jatropha đã khử chất béo chưa qua xử lý là 1,8 mg/g, trong khi PE trong DJKM là không thể phát hiện được. Các chất ức chế trypsin và lectin cũng không được phát hiện trong DJKM, trong khi mức phytate và NSP trong DJKM lần lượt là 95 g/kg và 160 g/kg (Bảng 2).

Bảng 2 Thành phần dinh dưỡng và thành phần axit amin của nguyên liệu thức ăn.

¹ Lượng vật liệu tối thiểu (mg/ mL môi trường xét nghiệm) tạo ra sự kết tụ.

Thành phần dinh dưỡng và đặc điểm axit amin của nguyên liệu thức ăn và khẩu phần được thể hiện trong Bảng 2 và 3. Khẩu phần chứa khoảng 350 g/kg protein thô, 95–99 g/kg lipid thô và 19,0 kJ g tổng năng lượng là chất đẳng nitơ, isolipidic và đẳng năng. Hàm lượng tro nằm trong khoảng 113–142 g/ kg. Tất cả các khẩu phần ăn thử nghiệm đều có thành phần axit amin thiết yếu gần như giống nhau ngoại trừ lysine trong khẩu phần ăn dựa trên DJKM thấp hơn một chút so với khẩu phần ăn đối chứng.

Bảng 3 Thành phần dinh dưỡng và thành phần axit amin của các khẩu phần thí nghiệm (g/ kg thức ăn).

Thành phần axit amin của khẩu phần thử nghiệm được tính toán từ thành phần axit amin của từng nguyên liệu thức ăn riêng lẻ.

Hành vi của tôm, lượng ăn vào và tỷ lệ sống, hiệu suất tăng trưởng và sử dụng chất dinh dưỡng

Khả năng hấp thụ thức ăn của tôm được đánh giá dựa trên quan sát trực quan. Trong suốt thí nghiệm, tôm có khả năng chấp nhận thức ăn tốt và hành vi của chúng bình thường. Không có thức ăn thừa được quan sát thấy trong bể. Tỷ lệ sống sót của tôm là 100% trong suốt thí nghiệm. Điều này cho thấy điều kiện môi trường rất phù hợp cho L. vannamei và không có khẩu phần ăn thử nghiệm nào gây ra sự thiếu hụt dinh dưỡng nghiêm trọng hoặc sự không tương thích.

Hình 1 cho thấy mức tăng khối lượng cơ thể hàng tuần của tôm thẻ chân trắng. Từ tuần thứ hai trở đi, có sự khác biệt về tốc độ tăng trưởng giữa các nhóm. Nhóm đối chứng có tốc độ tăng trưởng thấp hơn so với các nhóm khác. Xu hướng này được duy trì cho đến khi kết thúc thí nghiệm. Bảng 4 trình bày hiệu suất tăng trưởng và các thông số sử dụng chất dinh dưỡng của tôm. Nghiên cứu trước đây của chúng tôi cho thấy việc thay thế 50% protein FM bằng DJKM cho cá chép và cá hồi vân mang lại hiệu suất tăng trưởng và sử dụng chất dinh dưỡng tương tự như nhóm được cho ăn FM (Kumar và cộng sự 2010a,b,c,d). Trong nghiên cứu này, hiệu suất tăng trưởng và sử dụng chất dinh dưỡng của nhóm tôm được cho ăn DJKM tốt hơn so với nhóm được cho ăn FM. Nhiều nhà nghiên cứu (Colvin & Brand 1977; Davis & Arnold 2000; Fox và cộng sự 2004; Gonzalez-Rodriguez & Abdo de la Parra 2004; Amaya và cộng sự 2007) đã báo cáo rằng protein FM có thể được thay thế ở mức 40–80% bằng protein thực vật trong khẩu phần ăn của tôm. Tuy nhiên, việc bổ sung protein thực vật cao hơn (thay thế hơn 80% bột cá) có thể dẫn đến tốc độ tăng trưởng thấp hơn do lượng thức ăn ăn vào thấp hơn. Paripatananont và cộng sự (2001) báo cáo rằng protein đậu nành cô đặc có thể thay thế 50% protein FM mà không ảnh hưởng đến hiệu suất tăng trưởng và sử dụng chất dinh dưỡng. Sua’rez và cộng sự (2009) đã thay thế FM cao tới 80% bằng hỗn hợp bột đậu nành và bột dầu hạt cải và chứng minh rằng khẩu phần ăn chủ yếu dựa vào protein thực vật đáp ứng L. vannamei. Trong nghiên cứu này, phản ứng tăng trưởng cao hơn của các nhóm được cho ăn bằng DJKM có thể là do lượng protein sẵn có từ DJKM cao hơn so với FM, giúp tăng cường việc sử dụng thức ăn. Có khả năng có tác dụng hiệp đồng giữa các nguyên liệu thức ăn được sử dụng (FM và DJKM); cả hai đều bổ sung cho nhau về thành phần axit amin. Do đó, protein DJKM kết hợp với protein FM có thể tạo ra khả năng tiêu hóa chất dinh dưỡng và năng lượng tuyệt vời, đồng thời dẫn đến hiệu suất tăng trưởng và sử dụng chất dinh dưỡng cao hơn ở tôm. Thành phần axit amin của khẩu phần được thử nghiệm cho thấy nhu cầu dinh dưỡng của tôm được đáp ứng trong tất cả các khẩu phần ăn. Nhìn chung, tôm có thể sử dụng DJKM hiệu quả làm nguồn protein. Bột hạt Jatropha được giải độc có thể thay thế 50% protein FM trong khẩu phần ăn của tôm mà không làm ảnh hưởng đến các thông số tăng trưởng và sử dụng chất dinh dưỡng. Kết quả từ nghiên cứu này cung cấp thông tin quan trọng về tiềm năng sử dụng các công thức thức ăn thay thế có hàm lượng protein động vật thấp cho tôm thẻ chân trắng (L. vannamei) trong điều kiện thí nghiệm.

Hình 1 Tăng khối lượng cơ thể của tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei) cho ăn khẩu phần thử nghiệm trong 8 tuần.

Bảng 4 Hiệu suất tăng trưởng và sử dụng chất dinh dưỡng của tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei) được cho ăn khẩu phần thử nghiệm trong 8 tuần.

IBM, Khối lượng cơ thể ban đầu; FBM, Khối lượng cơ thể cuối cùng; BMG, Tăng khối lượng cơ thể; SGR, Tốc độ tăng trưởng cụ thể; MGR, Tốc độ tăng trưởng trao đổi chất; FCR, hệ số chuyển đổi thức ăn; PER, Tỷ lệ hiệu quả protein.

Giá trị là trung bình (n = 4) ± SD.

Các giá trị trung bình trong cùng một cột có chỉ số trên khác nhau khác nhau có ý nghĩa thống kê (P < 0,05).

Thành phần hóa học toàn cơ thể tôm và hàm lượng cholesterol trong hemolymp

Thành phần hóa học toàn cơ thể được thể hiện trong Bảng 5. Độ ẩm của toàn bộ cơ thể tôm không khác biệt đáng kể giữa ba nhóm. Paripatananont và cộng sự (2001) cũng quan sát thấy kết quả tương tự. Trong nghiên cứu của họ, tôm sú (Penaeus monodon) được nuôi bằng protein đậu nành đậm đặc thay thế 25–100% protein FM không có sự khác biệt đáng kể về độ ẩm toàn cơ thể. Trong cùng một nghiên cứu cũng cho thấy rằng việc đưa protein đậu nành đậm đặc vào khẩu phần ăn của tôm dẫn đến hàm lượng lipid thô và tổng năng lượng trong toàn cơ thể cao hơn so với khẩu phần ăn dựa trên protein FM. Trong nghiên cứu này, hàm lượng lipid thô trong toàn bộ cơ thể tôm không khác biệt đáng kể giữa ba nhóm, trong khi hàm lượng tổng năng lượng cao nhất trong toàn bộ cơ thể tôm được quan sát thấy ở nhóm Đối chứng, tiếp theo là nhóm JC25 và JC50; tất cả đều khác biệt đáng kể. Hàm lượng năng lượng tổng trong toàn bộ cơ thể tôm ở nhóm được cho ăn bột cá (đối chứng) cao hơn so với nhóm được cho ăn DJKM dường như là do hàm lượng protein (P < 0,05) cao hơn đáng kể. Khẩu phần dựa trên bột hạt Jatropha đã được giải độc (JC25 và JC50) có chứa phytate liên kết và hầu hết các khoáng chất liên kết với phytate. Do đó, lượng khoáng chất sẵn có trong cơ thể thấp hơn dẫn đến hàm lượng tro thấp hơn, như được quan sát thấy ở nhóm JC25 và JC50. Mặt khác, Paripatananont và cộng sự (2001) quan sát thấy rằng protein đậu nành cô đặc thay thế 25-100% protein FM không khác biệt đáng kể về hàm lượng tro trong toàn bộ cơ thể tôm.

Bảng 5 Thành phần hóa học cơ thể tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei) của các nhóm thí nghiệm khác nhau (g kg trọng lượng cơ bản ướt ± SD).

Giá trị là trung bình (n = 4) ± SD.

Các giá trị trung bình trong cùng một cột có chỉ số trên khác nhau khác nhau có ý nghĩa thống kê (P < 0,05).

Cholesterol là thành phần quan trọng của màng tế bào và là tiền chất của axit mật, steroid và hormone lột xác. Nó là chất dinh dưỡng thiết yếu cho sự tăng trưởng và tồn tại của tất cả các loài giáp xác (Kanazawa và cộng sự 1971). Khẩu phần thử nghiệm được bổ sung cholesterol vì tôm, giống như các loài giáp xác khác, không thể tổng hợp cholesterol mới (Teshima & Kanazawa 1971). Các nghiên cứu trước đây đã chứng minh rằng việc bổ sung cholesterol trong khẩu phần ăn giúp cải thiện hiệu suất sinh học của tôm (P. japonicus; Teshima & Kanazawa 1986), tôm sú (P. monodon; Sheen và cộng sự 1994) và tôm thẻ chân trắng (L. vannamei; Duerr & Walsh 1996). Mức cholesterol trong hemolymp của tôm bị ảnh hưởng bởi khẩu phần ăn uống. Hình 2 cho thấy mức cholesterol thấp hơn (P > 0,05) được quan sát thấy ở nhóm JC25 và JC50. Bột hạt Jatropha khử độc làm giảm hàm lượng cholesterol trong hemolymp so với nhóm đối chứng. Sự giảm nồng độ cholesterol trong hemolymp trong khẩu phần ăn của tôm có protein thực vật phù hợp với kết quả của Cheng & Hardy (2010). Họ quan sát thấy protein FM được thay thế bằng SBM làm giảm cholesterol trong hemolymp ở L. vannamei. Ở động vật trên cạn, các sản phẩm thực vật thường được coi là có tác dụng hạ cholesterol, chủ yếu là do hàm lượng isoflavone giống oestrogen tương đối cao (Setchell & Cassidy 1999). Quá trình chuyển hóa cholesterol ở động vật, cá và tôm có thể khác nhau, và phản ứng hạ cholesterol máu đối với việc cung cấp protein thực vật trong khẩu phần ăn ở tôm có thể là do tăng bài tiết muối mật, ức chế hấp thu cholesterol ở ruột hoặc chỉ là do ngừng FM chứ không phải do tác động trực tiếp của protein thực vật.

Hình 2 Nồng độ cholesterol trong hemolymp tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei) của các nhóm thí nghiệm khác nhau.

Kết luận

Bột hạt Jatropha được giải độc có thể thay thế 50% protein FM trong khẩu phần ăn của tôm mà không làm ảnh hưởng đến các thông số tăng trưởng và sử dụng chất dinh dưỡng. Nhìn chung, hiệu suất tăng trưởng và sử dụng chất dinh dưỡng ở tôm chân trắng (L. vannamei) đối với các nhóm được cho ăn DJKM đều tốt hơn so với các nhóm được cho ăn bột cá, cho thấy rằng tôm có thể sử dụng DJKM một cách hiệu quả và DJKM là nguồn protein chất lượng tốt. Kết quả của nghiên cứu này mở rộng danh mục nguồn protein thực vật có thể được sử dụng trong thức ăn cho tôm và mở ra cơ hội thị trường mới cho việc sử dụng nguồn thức ăn mới cho ngành nuôi tôm.

Theo T. HARTER, F. BUHRKE, V. KUMAR, U. FOCKEN, H.P.S. MAKKAR & K. BECKER

Nguồn: https://www.academia.edu/95776502/Substitution_of_fish_meal_by_Jatropha_curcas_kernel_meal_Effects_on_growth_performance_and_body_composition_of_white_leg_shrimp_Litopenaeus_vannamei_?email_work_card=view-paper

Biên dịch: Nguyễn Thị Quyên – Tôm Giống Gia Hóa Bình Minh

TÔM GIỐNG GIA HÓA – CHÌA KHÓA THÀNH CÔNG

Xem thêm:

Kỹ Thuật Nuôi, Tin Tức