English
Tóm tắt
Một thử nghiệm đã được tiến hành để đánh giá hiệu quả của việc bổ sung khẩu phần ăn theo mức độ phân loại kali (K+) và magie (Mg2+) trên tôm thẻ chân trắng Litopenaeus vannamei được nuôi bằng cách sử dụng IGSW với 10 ppt. Hai loại nước khác nhau, IGSW không được tăng cường ion (R-IGSW) và IGSW được tăng cường K+ & Mg2+ (F-IGSW) đã được sử dụng. Tôm được bổ sung K+ & Mg2+ trong thức ăn có tốc độ tăng trưởng nhanh hơn và tỷ lệ sống cao hơn đáng kể so với tôm không được bổ sung. Tôm được bổ sung K+ & Mg2+ trong thức ăn không có sự khác biệt đáng kể về khả năng điều hòa thẩm thấu so với tôm không được bổ sung. Tôm được bổ sung K+ & Mg2+ trong thức ăn có nồng độ K+, Na+, Mg2+ và Ca2+ huyết thanh cao hơn đáng kể so với tôm không được bổ sung.
Giới thiệu
Nhiễm mặn đất và nước ngầm là một vấn đề nghiêm trọng trên toàn thế giới, bao gồm cả Ấn Độ. Nước mặn nội địa (IGSW) có thành phần ion khác với nước biển tự nhiên, đặc biệt là hàm lượng kali và magie thấp hơn. Tôm thẻ chân trắng (L. vannamei) là một loài thủy sản có giá trị được nuôi ở cả vùng ven biển và nước lợ. Để nuôi tôm thẻ chân trắng trong môi trường IGSW, cần bổ sung kali và magie vào nước hoặc thức ăn. Một nghiên cứu đã được thực hiện để đánh giá hiệu quả của việc bổ sung kali và magie vào thức ăn của tôm thẻ chân trắng được nuôi trong môi trường IGSW. Kết quả cho thấy, tôm được bổ sung kali và magie trong thức ăn có tốc độ tăng trưởng và tỷ lệ sống cao hơn đáng kể so với tôm không được bổ sung. Việc bổ sung kali và magie vào thức ăn là một phương pháp hiệu quả và kinh tế để cải thiện sự tăng trưởng và tỷ lệ sống của tôm thẻ chân trắng trong môi trường IGSW. Trọng tâm chính của nghiên cứu này là đánh giá sự tăng trưởng và tỷ lệ sống của tôm thẻ L. vannamei được nuôi trong môi trường IGSW thô được cho ăn với các mức kali và magiê khác nhau trong khẩu phần ăn cũng như tính khả thi của nó trong việc thay thế sửa đổi ion qua nước.
Chuẩn bị nghiên cứu
Tôm thẻ chân trắng L. vannamei PL15 không chứa mầm bệnh (SPF) được nuôi trong ao đất (200 m2) trong thời gian 30 ngày ở nước mặn nội địa có nồng độ K+ 100% tương đương nước biển và tỷ lệ Ca2+:Mg2+ duy trì ở mức 1. :2,5, để thu được tôm con (3,19±0,18 g) cho thí nghiệm. PL được cho ăn bằng thức ăn vụn thương mại ban đầu (Avanti Feeds Limited, Andhra Pradesh, Ấn Độ) 3-4 lần/ ngày với sinh khối 25%. Tôm con được thu thập từ ao, thích nghi và ương trong bể FRP dung tích 500 L trong thời gian 6 ngày với đủ sục khí và cho ăn tự do.
Nước mặn nội địa cần thiết cho thí nghiệm được chuẩn bị. IGSW thô 15 ppt từ giếng khoan được bơm vào bể xi măng và để lắng trong 1 tuần. Sau đó, nước được lọc bằng túi lọc 100 µ và được hút vào bên trong phòng thí nghiệm ẩm ướt, sau đó được bảo quản trong 12 bể FRP (1200 L). Nước được khử trùng bằng cách sử dụng bột tẩy trắng (Canxi hypochlorite) ở mức 15 mg/L và được sục khí mạnh trong ít nhất 48 giờ trước khi sử dụng. Nước lưu trữ được pha loãng với nước ngọt để tạo ra độ mặn 10 ppt không đổi trong tất cả các môi trường xử lý. Hai loại nước được sử dụng trong thí nghiệm này (i) nước mặn nội địa thô (R-IGSW); (ii) nước mặn nội địa được tăng cường (F-IGSW) có hàm lượng K+ tương đương 100% nước biển và tỷ lệ Ca2+:Mg2+ duy trì ở mức 1:2,5. FIGSW được điều chế bằng cách sửa đổi R-IGSW bằng Muriate of Potash (KCl) và Magiê Clorua (MgCl2.6H2O). Tất cả nước thử nghiệm và nước đối chứng đều được chuẩn bị 15 ngày trước khi bắt đầu thử nghiệm.
Lượng kali và magie được tính theo công thức sau:
Lượng kali cho F -IGSW = (10,7 x độ mặn) – lượng kali khả dụng trong R – IGSW
Lượng magie cho F -IGSW = (hàm lượng canxi x 2,5) – (magie khả dụng trong F -IGSW x 3,7)
Bốn loại thức ăn thử nghiệm đã được sử dụng trong nghiên cứu này bằng cách điều chỉnh các mức độ khác nhau của KCl (Merck, Ấn Độ) và MgCl2 (Merck, Ấn Độ) làm nguồn cung cấp K+ và Mg2+ tương ứng trong thức ăn viên tôm thương mại có kích thước 1,2-1,6 mm (CP Aquaculture India Pvt. Ltd., Chennai, Ấn Độ) bằng phương pháp phủ gelatin. Các khẩu phần thử nghiệm khác nhau được chuẩn bị và mức độ bao gồm khoáng chất như sau, F1 (5 g KCl & 150 mg MgCl2 /kg thức ăn); F2 (10 g KCl và 300 mg MgCl2 /kg thức ăn); F3 (15 g KCl và 450 mg MgCl2 /kg thức ăn); và F4 (0 g KCl và 0 mg MgCl2 /kg thức ăn). Để chuẩn bị 1 kg thức ăn, lượng KCl và MgCl2 cần thiết được hòa tan trong 125 ml nước cất và dung dịch được đun sôi. Sau đó, 1,5 g gelatin được hòa tan từ từ trong dung dịch sôi và để nguội đến nhiệt độ phòng và hỗn hợp này được trộn đồng nhất với thức ăn thương mại (CP Aquaculture India Pvt. Ltd., Chennai, Ấn Độ). Phân tích gần đúng mô thân thịt của tôm và khẩu phần ăn được đo bằng các phương pháp tiêu chuẩn (AOAC, 1995) được đề cập trong Bảng 1.
Bảng 1. Thành phần gần đúng của các khẩu phần thí nghiệm (% chất khô cơ bản, TB ± SE)
1Protein thô, 2 chiết xuất Ether, 3 Chiết xuất không chứa nitơ, 4 Chất xơ thô, 5Năng lượng tiêu hóa (K cal/ 100g) = (% CP x 4) + (% EE x 9) + (NFE x 4) (Halver, 1976) Giá trị với các chỉ số trên khác nhau trong cùng một cột khác nhau đáng kể (p < 0,05) và các giá trị được biểu thị bằng trung bình ± SE
Một thí nghiệm kéo dài 60 ngày đã được tiến hành để kiểm tra xem việc bổ sung kali và magiê qua thức ăn có cải thiện hiệu suất sản xuất tôm thẻ chân trắng L. vannamei trong R-IGSW hay không. 240 con tôm thẻ chân trắng L.vannamei (3,19±0,18 g) được phân phối ngẫu nhiên trong 8 nhóm thử nghiệm riêng biệt 3 lần với sự kết hợp khác nhau của việc điều chỉnh K+-Mg2+ trong nước và thức ăn. Hệ thống bao gồm 24 bể nhựa tròn (dung tích 150 L) có nắp đục lỗ để tránh tôm nhảy ra ngoài. Các nhóm xử lý khác nhau bao gồm C (R-IGSW với thức ăn F4); T1 (F-IGSW với nguồn thức ăn F4); T2 (R-IGSW với nguồn thức ăn F1); T3 (R-IGSW với nguồn thức ăn F2); T4 (R-IGSW với nguồn thức ăn F3); T5 (F-IGSW với nguồn thức ăn F1); T6 (F-IGSW với thức ăn F2) và T7 (F-IGSW với thức ăn F3). Tôm được cho ăn với tỷ lệ 3% trọng lượng cơ thể, chia làm 4 liều bằng nhau. Tuy nhiên, thức ăn thừa và phân tôm được hút ra hàng ngày và mực nước không đổi được duy trì bằng cách bổ sung nước từ các bể chứa tương ứng. Trong tất cả các nhóm thử nghiệm, oxy hòa tan, độ pH và nhiệt độ được đo hàng ngày, trong khi amoniac, nitrit, tổng độ kiềm, tổng độ cứng được theo dõi hai lần một tuần.
Các thông số tăng trưởng được theo dõi định kỳ 10 ngày trong toàn bộ thời gian nuôi 60 ngày. Tôm được cân và tính toán các thông số tăng trưởng theo công thức như sau;
Tôm đang trong giai đoạn lột xác được chọn để thu thập huyết thanh và được thu thập ngẫu nhiên từ các con tôm trong bể và gộp chung lại. Hemolymp (500-800 µL) được thu thập bằng ống tiêm Tuberculin 1,0 mL từ chỗ nối giữa đầu ngực và bụng bằng cách đâm kim vào khoang màng ngoài tim. Các mẫu được chuyển vào ống Eppendorf 1,5 mL và được đặt trong tủ lạnh để đông tụ (4°C, 15 phút). Ngay sau khi đông máu, cục máu đông được nghiền nát bằng một thanh nhựa và mẫu được ly tâm ở tốc độ 2990 x g trong 30 phút (Spinwin, MC02, Tarsons, Daihan Scientific, Seoul, Korea) để thu được huyết thanh (Tantulo & Fotedar, 2006). Độ thẩm thấu của nước và huyết thanh (mOsm /kg) được đo bằng máy đo thẩm thấu nội soi. Khả năng điều hòa thẩm thấu (OC) của cá con trong các nhóm khác nhau được tính bằng cách trừ đi độ thẩm thấu của huyết thanh và nước. Các mẫu huyết thanh còn lại được bảo quản ở -20°C cho đến khi phân tích sâu hơn.
Hoạt tính Na+ K+ -ATPase trong mang được xác định. Hỗn hợp phản ứng gồm 1ml dung dịch đệm Tris HCl, 100mM NaCl, 20Mm KCl, 3mM MgCl2, 5mM ATP và các mẫu được chạy khi có và không có sự hiện diện của ouabain. Sau khi kết thúc phản ứng, phần nổi phía trên được lấy để định lượng photpho vô cơ. Hoạt tính ATPase được biểu thị bằng số mol nano Pi giải phóng/phút/ mg protein ở 37°C.
Các mẫu huyết thanh được phân hủy bằng axit trong hệ thống phân hủy vi sóng. Axit Nitric và axit Hydrofluoric được thêm vào theo tỷ lệ 5:1 tỷ lệ được giữ lại để phân hủy và các mẫu đã phân hủy hoàn toàn được để nguội đến nhiệt độ phòng; sau đó, các mẫu đã phân hủy được lọc bằng giấy Whatman có kích thước lỗ 0,45-μm và tổng thể tích 50 ml được tạo ra bằng TDW và tiếp tục được phân tích kim loại thông qua Quang phổ phát xạ nguyên tử – Plasma kết hợp cảm ứng, ICP-AES (SPECTRO Analytical Instruments GmbH, Đức) tại SAIF, Viện Công nghệ Ấn Độ, Mumbai, Ấn Độ.
Kết quả
Thành phần gần đúng của các loại thức ăn thử nghiệm khác nhau F1, F2, F3 và F4 được đưa ra trong Bảng 1. Trong suốt thời gian thử nghiệm 60 ngày, không có sự khác biệt nào về chất lượng nước được quan sát giữa các nghiệm thức thử nghiệm khác nhau. Oxy hòa tan (7,8 mg/L), pH (8,2), nhiệt độ (23,1°C), tổng nitơ amoniac (0,25 – 0,36 mg/L), nitơ nitrit (0,07 đến 0,71 mg/L), K+ (12,75- 330 mgL -1), Mg2+ (452,5-597,5 mg/L), Ca2+ (86,5-117,5 mg/L) vẫn nằm trong giới hạn chấp nhận được đối với nuôi cấy L. vannamei (Bảng 2).
Bảng 2. Các thông số lý hóa trong thí nghiệm tăng trưởng ở tôm thẻ chân trắng L. vannamei (Trung bình ±S.E)
Có sự khác biệt đáng kể về tỷ lệ sống sót của tôm thẻ chân trắng L.vannamei được nuôi ở các nhóm điều trị khác nhau (Bảng 3). Tỷ lệ sống (%) trong FIGSW cao hơn đáng kể so với R-IGSW (Bảng 4). Tất cả tôm đều chết trong vòng 3 ngày kể từ khi bắt đầu thí nghiệm ở nhóm đối chứng (C), trong đó tôm thí nghiệm được nuôi trong IGSW thô bằng cách sử dụng thức ăn F4 không bổ sung kali và magiê. Ngoại trừ trường hợp sống sót, nghiệm thức này đã bị loại khỏi nghiên cứu và phân tích sâu hơn do tỷ lệ chết hoàn toàn. Tỷ lệ sống cao hơn đáng kể (P<0,05) được quan sát thấy ở nhóm T5 và T6 so với các nhóm khác.
Bảng 3. Mức độ hoạt động sống, WG1, SGR2, FCR3, PER4 và Na+ K+ -ATPase (trung bình±SE) của tôm được nuôi ở các nghiệm thức khác nhau sau 60 ngày.
1tăng cân; 2 tốc độ tăng trưởng cụ thể; 3 tỷ lệ chuyển đổi thức ăn; 4 Tỷ lệ hiệu quả của protein. Các giá trị có chỉ số trên khác nhau trong cùng một cột có sự khác biệt đáng kể (P<0,05) và được biểu thị bằng giá trị trung bình ± SE (n=9). *Tất cả các con vật đều chết trong vòng 3 ngày kể từ khi bắt đầu thí nghiệm ở nhóm đối chứng (C)
Vào cuối thử nghiệm thực nghiệm, có sự khác biệt đáng kể (P<0,05) giữa các nghiệm thức khác nhau về chỉ số WG (%) (Bảng 3), với mức tăng cân cao nhất (%) được quan sát thấy ở các nhóm T1, T6 và T7. Trong thử nghiệm này, quan sát thấy sự khác biệt đáng kể về giá trị SGR, FCR và PER giữa các nhóm điều trị khác nhau (Bảng 3). Giá trị WG (%), SGR và PER cao hơn đáng kể ở nhóm F-IGSW so với giá trị của RIGSW trong khi giá trị FCR thấp hơn đáng kể ở nhóm F-IGSW (Bảng 4). Giá trị SGR cao hơn đáng kể (P<0,05) ở nhóm T1, T5, T6 và T7 so với các nhóm khác. FCR được phát hiện là thấp hơn đáng kể (P<0,05) ở nhóm T6 so với các nhóm khác. Ngoài ra, giá trị PER ở nhóm T6 cao hơn đáng kể so với các nhóm khác.
Không có sự khác biệt đáng kể giữa nhóm FIGSW và R-IGSW về các thông số điều hòa thẩm thấu (Bảng 4). Không có sự khác biệt đáng kể (P>0,05) giữa độ thẩm thấu của tôm được nuôi ở các nhóm xử lý khác nhau (Bảng 5) có hoặc không có tăng cường kali magie trong nước hoặc thức ăn. Khả năng điều hòa thẩm thấu không thay đổi đáng kể (P<0,05) giữa các nghiệm thức trong khi nó khác nhau về mặt số lượng trong phạm vi hẹp (641,33 đến 633,33 mOsmol /kg). Một xu hướng tương tự cũng được quan sát thấy với các giá trị thẩm thấu trong huyết thanh và nước. Tương tự, không có sự khác biệt đáng kể giữa hoạt động Na+ K + -ATPase của mang giữa các nhóm nghiệm thức.
Bảng 4. Sự tăng trưởng và phản ứng điều hòa thẩm thấu của tôm thẻ chân trắng L. vannamei ở R-IGSW và F-IGSW
Bảng 5. Huyết thanh K+, Na+, Ca2+, Mg2+, Độ thẩm thấu của huyết thanh, nước và khả năng điều hòa thẩm thấu (OC) (trung bình±SE) của các nghiệm thức khác nhau
Các giá trị có chỉ số trên khác nhau trong cùng một cột có sự khác biệt đáng kể (P<0,05) và dữ liệu được biểu thị dưới dạng Trung bình ±S.E (n=9).
Nồng độ K+ và Na+ huyết thanh được tăng cường đáng kể nhờ bổ sung kali trong cả nước và thức ăn. Tuy nhiên, nồng độ K+ và Na+ huyết thanh cao hơn ở những nhóm được nuôi trong vùng nước tăng cường (T5, T6 và T7) trong khi đó lại thể hiện sự gia tăng tối thiểu khi bổ sung khẩu phần ăn vì giá trị cao nhất là ở nhóm T7. Ở tất cả các cấp độ tăng cường vi chất trong thức ăn hoặc nước, nồng độ Ca2+ và Mg2+ trong huyết thanh cũng tăng lên ở các nghiệm thức có R-IGSW (T5, T6 và T7) so với các nhóm được nuôi trong F-IGSW.
Thảo luận
Trong nghiên cứu này, tỷ lệ chết hoàn toàn của tôm giống L. vannamei được quan sát thấy trong nước mặn thô trong đất liền mà không có thức ăn có bổ sung. Có thể là do thiếu kali trong nước cũng như thức ăn. Tỷ lệ sống của L. vannamei được quan sát là phụ thuộc vào sự sẵn có của khoáng chất K+ và Mg2+ trong vùng nước có độ mặn thấp và việc bổ sung các khoáng chất này trong khẩu phần ăn có thể giúp cải thiện đáng kể tỷ lệ sống của tôm nuôi trong điều kiện độ mặn thấp (Roy, 2006; Shiau & Hsieh, 2001). Trong điều kiện độ mặn thấp, việc bổ sung 1% kali chelat thông qua khẩu phần ăn đã cải thiện sự phát triển của tôm thẻ chân trắng L. vannamei; tuy nhiên tỷ lệ sống của động vật tương đối thấp hơn. Nghiên cứu này có tỷ lệ sống cao nhất đạt được khi bổ sung thức ăn F1 và F2 ở nghiệm thức T5 (96,93±0,75) và T6 (97,5±0,30).
Nghiên cứu này cho thấy sự tăng trưởng cao nhất của tôm thẻ chân trắng L. vannamei có thể đạt được bằng cách tăng cường khoáng chất trong cả nước và thức ăn. Tôm chỉ có thể tồn tại và phát triển bằng cách cung cấp kali magiê trong khẩu phần ăn. Những con tôm được nuôi trong nước tăng cường với các mức bổ sung kali magie khác nhau cho thấy hiệu quả tăng trưởng tốt nhất về tốc độ tăng trọng (%) và tốc độ tăng trưởng cụ thể so với các nghiệm thức khác. FCR và PER tốt hơn cũng được quan sát thấy ở các nhóm được cho ăn với mức bổ sung K + và Mg 2+ vừa phải (thức ăn F2) ở cả RIGSW và F-IGSW. Tuy nhiên, sự tăng trưởng tối đa chỉ có thể đạt được thông qua việc tăng cường khoáng chất trong hệ thống nuôi. Khẩu phần ăn chứa nồng độ kali khác nhau từ 5-15g /kg và nước biển thô và nước biển tăng cường lần lượt chứa 12,75 và 105 mg/L (Bảng 2) trong khi nồng độ kali trong nước biển có thể tăng lên tới 330 mg/L. Được biết, kali trong khẩu phần ăn có tác động tích cực đến sự tăng trưởng, điều hòa thẩm thấu, chuyển hóa nitơ và khả năng miễn dịch của tôm thẻ chân trắng được nuôi trong nước biển có độ mặn thấp cho thấy sự tăng trưởng của tôm thẻ chân trắng L. vannamei được cho ăn khẩu phần có chứa KCl, MgO và NaCl so với khẩu phần không có bất kỳ khoáng chất nào trong số này. Giảm magie cũng gây ra giảm kali trong cơ thể tôm, điều này đã được báo cáo trước đó ở L. vannamei. Thêm vào đó, sự thiếu hụt magiê ảnh hưởng đến hiệu suất sống và tăng trưởng của tôm giống và tôm con.
Trong nghiên cứu này, không có sự khác biệt đáng kể giữa khả năng điều hòa thẩm thấu (OC) của tôm được nuôi trong các nghiệm thức khác nhau có hoặc không có tăng cường kali-magiê trong nước hoặc thức ăn. Điều này có thể là do khả năng của động vật đối phó với phạm vi hẹp của nồng độ ion khác nhau. Không có sự khác biệt đáng kể giữa độ thẩm thấu huyết thanh và nước giữa các nghiệm thức. Sự khác biệt không đáng kể giữa độ thẩm thấu huyết thanh và kết luận rằng độ thẩm thấu huyết thanh không bị ảnh hưởng bởi việc bổ sung ion vào khẩu phần ăn vì nó phụ thuộc vào độ mặn của nước nuôi. Việc bổ sung vào khẩu phần các nguồn KCl, MgO, NaCl, phospholipid và cholesterol đã cải thiện khả năng điều hòa thẩm thấu của tôm.
Quá trình điều hòa ion và điều hòa thẩm thấu được điều chỉnh đáng kể bởi hoạt động của Na+ K+ -ATPase ở động vật giáp xác và kali là chất bắt buộc để kích hoạt Na+ K+ -ATPase (Mantel & Farmer, 1983). Trong nghiên cứu này, không có sự khác biệt đáng kể về hoạt động Na+ K+ -ATPase của mô mang giữa các nghiệm thức, hoạt động của Na+ K+ -ATPase không bị ảnh hưởng bởi khẩu phần ăn hoặc độ mặn. Ngược lại, thành phần của các ion trong huyết thanh thay đổi tùy theo mức độ khoáng chất trong khẩu phần ăn và kiểu điều hòa này cũng đã được chú ý ở các loài tôm He khác. Tuy nhiên, sự khác biệt giữa các cá thể trong thành phần ion được quan sát giữa các nhóm, cho thấy rằng việc bổ sung các ion K+ và Mg2+ trong nước nuôi cũng như thức ăn đã nâng cao nồng độ K+, Na+, Mg2+ và Ca2+ trong huyết thanh. Các nhóm được bổ sung bằng cả nước và khẩu phần ăn có hàm lượng ion huyết thanh tối đa. Điều đáng ngạc nhiên là các ion riêng lẻ được tăng cường này không tạo ra bất kỳ sự gia tăng nào về khả năng điều hòa thẩm thấu trong huyết tương, có thể là do động vật đã cân bằng độ thẩm thấu với các chất thẩm thấu hữu cơ.
Kết luận
Nghiên cứu này đã chứng minh rằng L. vannamei có thể được nuôi trong nước mặn thô trong đất liền bằng cách bổ sung kali và magie vào thức ăn với liều lượng 10 g KCl & 300 mg MgCl2. Tuy nhiên, tỷ lệ sống và tăng trưởng của tôm đạt được nhờ tăng cường ion trong nước vẫn cao hơn so với việc bổ sung khẩu phần ăn. Điều này có thể là do khả năng điều hòa thẩm thấu của ruột còn hạn chế so với mang và vỏ. Tuy nhiên, độ thẩm thấu tương tự đã đạt được bằng cách bổ sung ion vào khẩu phần ăn uống so với bổ sung nước. Nghiên cứu này cho thấy việc bổ sung đồng thời nước và thức ăn (5 g /kg KCl & 150 mg /kg MgCl2) với các ion mang lại sự tăng trưởng tốt nhất ở L. vannamei. Cần nghiên cứu sâu hơn trong tương lai để tối ưu hóa mức độ bổ sung khẩu phần ăn nhằm đạt được hiệu suất sản xuất tương tự ngang bằng với việc bổ sung ion vào nước.
Theo Iffat Jahan1, A. K. Reddy, S. Arun Sudhagar, V. Harikrishna, Shashank Singh, Tincy Varghese, P. P. Srivastava
Biên dịch: Nguyễn Thị Quyên – Tôm Giống Gia Hóa Bình Minh
TÔM GIỐNG GIA HÓA – CHÌA KHÓA THÀNH CÔNG
Xem thêm:
- Dự Án Sử Dụng Cảm Biến Sinh Học Chi Phí Thấp Để Phát Hiện Mầm Bệnh
- Thu Hồi Chất Dinh Dưỡng Lãng Phí Từ Nuôi Tôm Thông Qua Nuôi Kết Hợp Polychaetes Và Halophytes
- Ngành Tôm Ecuador Thiệt Hại 1,5 Tỷ USD Vào Năm 2023