Sử Dụng Hỗn Hợp Các Phụ Phẩm Thực Vật (Jatropha curcas) Và Động Vật (Cá Ủ Chua) Làm Nguồn Protein Trong Khẩu Phần Ăn Của Tôm (Litopenaeus Vannamei)

Tóm tắt

Nghiên cứu này đánh giá hiệu quả của việc sử dụng bột hạt Jatropha curcas (JCK) và bã thải cá rô phi ủ chua (FS) làm nguồn protein trong thức ăn cho tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei). Thử nghiệm được thực hiện trong điều kiện phòng thí nghiệm và ao nuôi. Tôm (2,90 g) được nuôi trong hệ thống tuần hoàn trong nhà trong 90 ngày. 6 khẩu phần ăn được sử dụng: 1 khẩu phần tham chiếu (RD) dựa trên bột cá (35% protein thô, 434 kcal/g). 5 khẩu phần thử nghiệm isoproteic and isoenergetic với tỷ lệ FS/JCK khác nhau: 75%FS/0%JCK; 56,25%FS/13,25%JCK; 26,5%FS/30,89%JCK; 18,75%FS/39,75%JCK; và 0%FS/53%JCK. Thử nghiệm này nhằm đánh giá các thông số tăng trưởng: tăng trọng, trọng lượng cuối cùng, tăng trọng, tốc dộ tăng trưởng cụ thể, tỷ lệ sống. Tôm (0,49 g) trong thử nghiệm trong ao được nuôi trong lồng 1 m³ trong ao trong 35 ngày và sử dụng 2 khẩu phần ăn: RD và 18,75%FS/39,75%JCK. Thử nghiệm này nhằm đánh giá tăng trọng và tỷ lệ sống. Kết quả cho thấy thử nghiệm trong phòng thí nghiệm có tăng trưởng tốt nhất ở nhóm tôm được cho ăn RD và 18,75%FS/39,75%JCK. Trọng lượng cuối cùng trung bình > 12 g, tăng cân > 9 g, tốc độ tăng trưởng cụ thể > 1,6%/ngày. Tỷ lệ sống cuối cùng trung bình: 90,97%. Thử nghiệm trong ao có tăng trọng và tỷ lệ sống tương tự nhau giữa 2 khẩu phần ăn. Kết hợp 18,75% FS/39,75% JCK làm nguồn protein là giải pháp thay thế tiềm năng cho bột cá trong thức ăn cho tôm thẻ chân trắng, hiệu quả cả điều kiện phòng thí nghiệm và ao nuôi.

Giới thiệu

Bột cá (FM) là nguồn protein chính cho cá và tôm, nhưng chi phí cao, nguồn cung hạn chế và chất lượng không ổn định đang thúc đẩy việc tìm kiếm các giải pháp thay thế. Bột đậu nành (SBM) là lựa chọn phổ biến, nhưng giá thành cũng đang tăng. Trong khi đó, ngô được sử dụng làm nguồn năng lượng, nhưng cũng đang được sử dụng cho ngành nhiên liệu sinh học. Do đó, tìm kiếm nguồn protein mới từ phụ phẩm thực vật và động vật là ưu tiên hàng đầu.

Jatropha curcas là cây đa năng và chịu hạn, phát triển mạnh ở vùng nhiệt đới và cận nhiệt đới. Tổ chức Jatropha Quốc tế dự kiến sản xuất 160 triệu tấn hạt giống vào năm 2017, 95% ở Châu Á. Nhân hạt chứa khoảng 60% dầu có thể chuyển đổi thành nhiên liệu sinh học. Bột nhân hạt thu được sau khi chiết xuất dầu là nguồn dinh dưỡng tuyệt vời và chứa 58-62% protein thô. Ngoại trừ lysine, hàm lượng các axit amin thiết yếu trong bột hạt J. curcas cao hơn trong bột đậu nành. Tuy nhiên, cũng có những hạn chế như chất kháng dinh dưỡng như hất ức chế trypsin, lectin và phytate và thành phần độc hại nhưu este phorbol. Kiểu gen J. curcas không độc hại không chứa este phorbol đã được báo cáo ở Mexico (Makkar cộng sự, 2008). Cây Jatropha có thể cho năng suất tới 4 tấn hạt mỗi năm từ 1 ha đất, có thể sản xuất khoảng 1 tấn bột hạt giàu protein (Makkar và Becker, 2009). Bột hạt Jatropha curcas có tiềm năng thay thế một phần bột cá trong thức ăn thủy sản, góp phần giải quyết nhu cầu protein ngày càng tăng cho ngành nuôi trồng thủy sản.

Việc sử dụng cá ủ chua thay thế bột cá (FM) là một hướng đi mới đầy tiềm năng cho ngành nuôi trồng thủy sản. Giải pháp này mang lại nhiều lợi ích như giảm chi phí thức ăn, bền vững, hiệu quả. Cá ủ chua là nguồn nguyên liệu dồi dào, giá thành rẻ hơn so với bột cá, tận dụng chất thải từ ngành thủy sản, góp phần bảo vệ môi trường. Bên cạnh đó, cá ủ chua cung cấp đầy đủ dinh dưỡng cho nhiều loài thủy sản. Nhiều nghiên cứu đã chứng minh hiệu quả của thức ăn ủ chua từ cá cho nhiều loài thủy sản khác nhau như Clarias gariepinus (Fagbenro và cộng sự, 1994), O. niloticus (El-Hakim và cộng sự, 2007; Soltan và El-Laithy, 2008), Salmo salar (Heras và cộng sự, 1994), Haliotis Fulgens (Viana và cộng sự, 1999), Arapaima gigas (Honczaryk và Maeda, 1998), và Ictalurus punctatus (Haard, 1992), cùng với các loài thủy sinh khác.

Kết hợp các nguồn protein khác nhau, bao gồm cả cá ủ chua, giúp tăng hiệu quả sử dụng protein và thúc đẩy tăng trưởng của thủy sản, cung cấp đầy đủ axit amin thiết yếu và axit béo theo nhu cầu dinh dưỡng của từng loài, tăng tỷ lệ hiệu quả protein (PER) và hiệu suất tăng trưởng (GCR). Nghiên cứu này báo cáo phản ứng tăng trưởng của tôm thẻ chân trắng L. vannamei bằng cách bổ sung bột hạt J. curcas và thức ăn ủ chua từ chất thải của cá làm nguồn protein trong khẩu phần ăn của tôm, trong điều kiện phòng thí nghiệm và ao nuôi.

Vật liệu và phương pháp

Hạt của J. curcas được lấy từ một cánh đồng thí nghiệm nằm ở Mazatlán, Sinaloa, Mexico (23°14’29” N và 106°24’35” W). Hạt tách vỏ lấy nhân. Nhân được sấy khô và nghiền nhỏ để làm thức ăn. Do hàm lượng lipid trong bột J. curcas cao (49,66±0,37%), nên tỷ lệ 1,5:10 p:v hexane được hòa tan trong bột, lọc và sấy khô, cuối cùng được bảo quản ở 4°C trước khi sử dụng.

Thức ăn ủ chua cho cá được chế biến bằng cách sử dụng các sản phẩm phụ của cá rô phi (các bộ phận không ăn được: đầu, da, đuôi, xương, nội tạng) thu được từ một nhà máy chế biến cá địa phương (Guasave 400, Guasave, Sinaloa, Mexico; 25°34′28″ N và 108° 28′16 ″ W).

Các sản phẩm phụ từ cá được băm nhỏ (Torrey®, M-22R), cho vào túi nhựa và đông lạnh (-20°C) trước khi sử dụng. Cá ủ chua được chuẩn bị trong các thùng nhựa 5 L bằng cách thêm 1 kg phụ phẩm cá và 15 mL axit formic (85%, loại thực phẩm). Chất nền được trộn để giảm độ pH xuống còn 3,8-4,0 (Fagbenro và Jauncey, 1993) và sau đó ủ trong điều kiện kỵ khí trong 7 ngày. Phạm vi nhiệt độ trong quá trình sản xuất cá ủ chua là 24-26°C. Sau đó, duy trì độ pH dưới 4,0 bằng axit formic trong 2 ngày đầu. Cuối cùng, thức ăn ủ chua được sấy khô trong lò sấy ở nhiệt độ 60°C trong 24 giờ và nghiền nhỏ trước khi đưa vào khẩu phần thí nghiệm. Độ pH của FS được điều chỉnh theo Gallardo và cộng sự (2012).

Phân tích hàm lượng tro, chất xơ thô, độ ẩm theo phương pháp AOAC (1990). Protein thô (CP) được xác định bằng phương pháp micro-Kjeldahl (Phần 976.05) và lipid thô được xác định bằng phương pháp AOAC (Phần 920.39; Bảng 1). Thành phần axit amin của JCK và FS được xác định theo AOAC (1990) (Bảng 2).

Bảng 1 – Thành phần dinh dưỡng (g/kg, chất khô) của cây Jatropha curcas và cá ủ chua (trung bình±SD; n = 3)

SD – độ lệch chuẩn.

Bảng 2 – Thành phần axit amin (g/kg, chất khô) của các khẩu phần thí nghiệm

* Không phát hiện.

Một khẩu phần ăn tham chiếu (RD) dựa trên FM đã được xây dựng có chứa 35% CP và 434 kcal/g khẩu phần. Từ RD, 5 khẩu phần nữa đã được xây dựng (Houser và Akiyama, 1997) kết hợp các tỷ lệ hỗn hợp FS/JCK khác nhau để tạo ra khẩu phần isoproteic và isoenergetic như sau: 75% FS/0%JCK; 56,25% FS/13,25%JCK; 26,5%FS/ 30,89%JCK; 18,75%FS/39,75%JCK; và 0%FS/53%JCK. Bột lúa mì được sử dụng làm chất độn và nguồn năng lượng khi xây dựng khẩu phần thí nghiệm (Bảng 3).

Bảng 3 – Hàm lượng thành phần (g/kg, chất khô) và phân tích dinh dưỡng (g/kg, chất khô) của sáu khẩu phần thử nghiệm cho tôm thẻ Litopenaeus vannamei (trung bình±SD, n = 3)

FS – cá ủ chua; JCK – Bột hạt Jatropha curcas.

Khẩu phần 1: 75% FS/0%JCK; Khẩu phần 2: 56,25% FS/13,25%JCK; Khẩu phần 3: 26,5%FS/30,89%JCK; Khẩu phần 4: 18,75%FS/39,75%JCK; Khẩu phần ăn 5: 0%FS/53%JCK.

¹Nutrimentos Acuícolas Azteca® , Guadalajara, Jalisco, México. Phân tích gần đúng: độ ẩm, 8,80%; đạm 62,96%; lipid 12,83%; tro 16,5%; chất xơ 0,06%; NFE, 7,66%. Thành phần axit amin: methionine, 2,4%; lysin 6,7%; threonine, 2,3%; arginine, 6,6%; isoleucine 4,9%; leucine là 6,5%; valin, 4,5%; histidine, 3,5%; phenylalanin 3,9%; tyrosin, 3,6%.

²Gelatin thương mại (De Muylder và cộng sự, 2008).

³Hỗn hợp vitamin (đơn vị tính bằng mg/kg, trừ khi có chỉ định): retinol, 5000 IU; cholecalciferol, 4000 UI; α-tocopherol axetat, 100; menadione, 5; thiamin, 60; riboflabin, 25; pyridoxine HCL, 50; axit pantothenic, 75; niacin, 40; biotin, 1; inositol, 400; cyanocobalamin, 0,2; axit folic10.

⁴Premix khoáng (g/kg khẩu phần): KCl, 0,5; MgSO₄ •7H₂O, 0,5; ZnSO₄ •7H₂O, 0,09; MnCl₂ •4H₂O, 0,0234; CuSO₄ •5H₂O, 0,005; KI, 0,0005; CoCl₂ •2H₂O, 0,00025; Na₂HPO₄ , 2,37

Thức ăn chăn nuôi được nghiền (Grindmaster, Model 505, Louisville, KY, USA), sàng (No. 60, FIIC, SA de CV, MX) qua rây 100-µ và trộn trong máy xay (KitchenAid, Model 600, Benson Harbor , MI, Hoa Kỳ) trong 30 phút. Thêm dầu cá, lecithin đậu nành và nước để tạo thành hỗn hợp sệt. Hỗn hợp ướt được ép viên qua máy xay thịt (Torrey^®, M-22R), hấp trong 5 phút và sấy khô trong tủ sấy khô ở nhiệt độ 60°C qua đêm hoặc cho đến khi các viên chứa độ ẩm dưới 10%. Cuối cùng, khẩu phần được chia nhỏ ở kích thước 3-4 mm và bảo quản trong túi nhựa ở nhiệt độ 5°C cho đến khi sử dụng.

Tôm được lấy từ một trang trại địa phương (Acuícola Camaronera Styl, Guasave, Sinaloa, Mexico; 25°23’42″N và 108°32’46″W) và được vận chuyển đến bể thích nghi thí nghiệm, nơi động vật được phân loại để đồng nhất hóa kích cỡ tôm.

Sau khi thích nghi, tôm con (2,90±0,06 g) được chọn ngẫu nhiên, cân và thả nuôi với mật độ 10 con/m² trong bể nhựa trong nhà dung tích 60L, nối với hệ thống tuần hoàn, trong đó 50% nước được thay mới mỗi ngày. Khẩu phần ăn đã được thử nghiệm với ba lần lặp lại bằng cách phân ngẫu nhiên vào các bể. Tất cả các thông số nước được đo hàng ngày. Nhiệt độ được duy trì ở mức 28,0±1°C bằng cách đưa máy sưởi (100 W) vào thùng chứa nước đầu vào và sục khí liên tục được cung cấp cho mỗi bể bằng máy khuếch tán đá kết nối với máy thổi 2 Hp để duy trì nồng độ oxy hòa tan trên 4,0 mg/L. Độ mặn (35,0±0,5 PSU) và độ pH (7,66 đến 7,98) được đo hàng ngày bằng khúc xạ kế cầm tay (model 300011, Sper Scientific, Hoa Kỳ) và máy đo pH. Chu kỳ quang (12 giờ sáng: 12 giờ tối) được duy trì bằng ánh sáng nhân tạo (ánh sáng ban ngày trắng). Tôm được cho ăn hai lần mỗi ngày (09:00 và 17:00) để đảm bảo rằng sự tăng trưởng được thể hiện rõ ràng nhờ tác dụng của khẩu phần ăn. Chất thải thức ăn được hút 2 giờ sau mỗi lần cho ăn và phân được hút hàng ngày. Khẩu phần ăn RD và thử nghiệm được cung cấp cho tôm trong 1 tuần trước khi bắt đầu thí nghiệm. Thí nghiệm kéo dài 90 ngày.

Nghiên cứu thứ hai trong điều kiện ao được thực hiện để so sánh hiệu quả của khẩu phần ăn thử nghiệm mang lại kết quả tốt nhất trong thử nghiệm trong phòng thí nghiệm trước đó và RD, nhưng ở quy mô lớn hơn. 8 lồng nhựa (đường kính mắt lưới 500 µm) có kích thước 1 m³ được đặt vào ao rộng 3,5 ha (Ejido La Culebra, Sinaloa, Mexico: 25°23’42” N và 108°32’46” W). Các lồng được gắn thành một hàng, giữ khoảng cách 1 m giữa các lồng, từ giữa và dọc theo ao. Để đảm bảo sự chuyển động đồng nhất của nước, hàng được đặt vuông góc với dòng nước chính của ao. Khẩu phần ăn được thử nghiệm với bốn lần lặp lại bằng cách phân ngẫu nhiên chúng vào các lồng. Tôm con (0,49±0,01 g) được cân và thả nuôi với mật độ ban đầu là 10 con/m². Hàng tuần, nhiệt độ nước (30±1,5°C) và oxy hòa tan (3,2±0,5 mg/L) được đo bằng máy đo oxy (YSI® Model 55, Yellow Springs, OH, USA) và độ mặn (38,0±0,5 PSU) bằng khúc xạ kế cầm tay (Sper Scientific® , Scottsdale, AZ, USA). Lồng được làm sạch ba ngày một lần bằng bàn chải mềm. Hàng ngày, tôm được cho ăn 2 lần (09:00 và 17:00). Một khay ăn có đường kính 20 cm (lưới 2 mm) được buộc và treo vào lồng với 30% khẩu phần ăn được sử dụng để quan sát lượng thức ăn ăn vào hàng ngày. 70% khẩu phần ăn được phân bố ở đáy lồng. Tôm được cho ăn khẩu phần ăn RD và thử nghiệm trong một tuần trước khi bắt đầu thí nghiệm kéo dài 35 ngày.

Tổng trọng lượng cơ thể (g) của tôm nuôi trong phòng thí nghiệm được đo hai tuần một lần, trong khi ở ao, tôm được cân hàng tuần. Trước khi cân, tôm được đặt trên giấy thấm để loại bỏ lượng nước dư thừa. Tăng trọng (WG) (g) = trọng lượng trung bình cuối cùng – trọng lượng ban đầu trung bình; và tốc độ tăng trưởng cụ thể (SGR) (%) = 100 × (ln trọng lượng cuối cùng – ln trọng lượng ban đầu)/ngày nuôi. Tỷ lệ sống (S) (%) = (số tôm cuối cùng trong mỗi nghiệm thức /số tôm ban đầu trong mỗi nghiệm thức) × 100.

Dữ liệu được phân tích về tính quy tắc và tính đồng nhất bằng các thử nghiệm của Shaphiro-Wilk và Bartlett (Zar, 2010). Phân tích ANOVA một chiều được sử dụng để đo lường tác động của các bữa ăn FS và JCK như các yếu tố. Sự khác biệt cá nhân giữa các nghiệm thức được xác định bằng thử nghiệm Tukey (Zar, 2010) nếu phát hiện thấy sự tương tác đáng kể giữa các yếu tố. Tỷ lệ sống được chuyển đổi log (ln) trước khi phân tích. Phần mềm Statistica 7.0 (StatSoft, Tulsa, OK) đã được sử dụng để xử lý dữ liệu. Ý nghĩa được đặt ở P <0, 05.

Sự bao gồm đầy đủ nhất của FS và JCK, dựa trên trọng lượng cuối cùng tối đa, WG và SGR của tôm được nghiên cứu trong điều kiện phòng thí nghiệm, được xác định bằng phương trình bậc hai (Shearer, 2000):

y = a₀ + a₁ FS (hoặc JCK) + a₂ FS² (hoặc JCK²), trong đó y là biến phản hồi; a₀, a₁ và a₂ là các hệ số hồi quy; và FS_max (hoặc JCK_max ) = –a₁ (2a₂ ) ⁻¹ ước tính việc đưa FS (hoặc JCK) (%) vào để có phản hồi tối đa.

Kết quả

Ngoại trừ năng lượng, các thành phần dinh dưỡng của các khẩu phần ăn thử nghiệm có sự khác biệt (Bảng 1). Hàm lượng protein cao hơn 42% CP trong JCK và FS. JCK và FS có hàm lượng protein, chất xơ và NFE cao hơn, nhưng hàm lượng lipid và tro thấp hơn. JCK có hàm lượng axit amin cao hơn FS, ngoại trừ valine. JCK có hàm lượng cysteine (17,00 g/kg) và leucine (9,28 g/kg) cao gấp ba lần FS. FS không có histidine (Bảng 2). So sánh với khẩu phần ăn khuyến nghị cho tôm cho thấy khẩu phần ăn 75% FS/0%JCK thiếu arginine, isoleucine, histidine và tyrosine, khẩu phần ăn 56,25% FS/13,25%JCK và 26,5%FS/30,89%JCK thiếu histidine và khẩu phần ăn 0%FS/53%JCK thiếu valine (Bảng 4).

Bảng 4 – Thành phần axit amin (g/kg, chất khô) của khẩu phần thí nghiệm so với khẩu phần tôm (35% protein thô)

FS – cá ủ chua; JCK – Bột hạt Jatropha curcas; ND – không xác định.

Khẩu phần 1: 75% FS/0%JCK; Khẩu phần 2: 56,25% FS/13,25%JCK; Khẩu phần 3: 26,5%FS/30,89%JCK; Khẩu phần 4: 18,75%FS/39,75%JCK; Khẩu phần 5: 0%FS/53%JCK.

1 Tacon và cộng sự (1999).

2 Cáo và cộng sự (2010).

3 Nunes và cộng sự (2014)

Có sự khác biệt đáng kể (P<0,05) về trọng lượng cuối cùng, WG và SGR giữa các nhóm thí nghiệm (Bảng 5). Tôm được cho ăn khẩu phần RD có trọng lượng cuối cùng, WG và SGR cao nhất (lần lượt là 12,68±0,59 g, 9,70±0,59 g và 1,61%/ngày). Khẩu phần 18,75%FS/39,75%JCK cũng cho kết quả tương tự. Tôm được cho ăn khẩu phần 75% FS/0% JCK có kết quả tăng trưởng thấp nhất. Tỷ lệ sống cuối cùng tương tự nhau giữa các nhóm (87,50±8,3% – 95,83±8,3%). Khẩu phần 26,5%FS/30,89%JCK cho tỷ lệ sống cao nhất. Phân tích hồi quy cho thấy mối tương quan đáng kể (P<0,05) được tìm thấy giữa tỷ lệ bổ sung FS và JCK trong khẩu phần ăn với trọng lượng cuối cùng, WG và SGR của tôm, trong đó phản ứng tối đa của các thông số tăng trưởng này đạt được khi tỷ lệ FS và JCK trong khẩu phần ăn lần lượt là 27,83-29% và 32,25-33,64% (Hình 1).

FS – cá ủ chua; JCK – Bột hạt Jathropa curcas; SE – lỗi tiêu chuẩn. Tỷ lệ phần trăm FS và JCK mang lại trọng lượng cuối cùng tối đa, mức tăng trọng và tốc độ tăng trưởng cụ thể được biểu thị (đường đứt nét, × cho FS và ♦ cho JCK) (trung bình±SE; n = 35).

Hình 1 – Mối tương quan giữa trọng lượng cuối cùng trung bình (A), mức tăng trọng (B) và tốc độ tăng trưởng cụ thể (C) của tôm Litopenaeus vannamei với mức bổ sung FS/JCK trong khẩu phần ăn.

Bảng 5 – Trọng lượng cuối cùng trung bình, mức tăng trọng, SGR và tỷ lệ sống của tôm thẻ L. vannamei non được cho ăn các khẩu phần ăn khác nhau dựa trên hỗn hợp JCK và FS trong điều kiện phòng thí nghiệm (trung bình±SD; n = 3)

SGR – tốc độ tăng trưởng cụ thể; JCK – Bột hạt Jatropha curcas; FS – cá ủ chua; SD – độ lệch chuẩn; RD – khẩu phần ăn tham chiếu. Khẩu phần 1: 75% FS/0%JCK; Khẩu phần 2: 56,25% FS/13,25%JCK; Khẩu phần 3: 26,5%FS/30,89%JCK; Khẩu phần 4: 18,75%FS/39,75%JCK; Khẩu phần 5: 0%FS/53%JCK.

* Các giá trị trong cùng một cột có chữ cái khác nhau là khác nhau có ý nghĩa thống kê (P<0,05).

Sau 35 ngày nuôi trong ao, tôm được cho ăn khẩu phần ăn RD và 18,75%FS/39,75%JCK tương tự nhau (P>0,05) về trọng lượng cuối cùng, WG, SGR và tỷ lệ sống (Bảng 6).

Bảng 6 – Trọng lượng cuối cùng trung bình, mức tăng trọng và tỷ lệ sống của tôm thẻ L. vannamei được cho ăn khẩu phần tham chiếu (RD) và khẩu phần 4 trong ao (trung bình ±SD; n = 4)

JCK – Bột hạt Jatropha curcas; FS – cá ủ chua; SD – độ lệch chuẩn. Khẩu phần 4: 18,75%FS/39,75%JCK.

Thảo luận

Sự kết hợp giữa các sản phẩm phụ từ thực vật và động vật làm nguồn protein để thay thế một phần hoặc toàn bộ FM trong khẩu phần ăn của tôm là một giải pháp thay thế khả thi để cân bằng các thành phần dinh dưỡng thiết yếu (axit amin, axit béo, vitamin, khoáng chất). Hỗn hợp bột phụ phẩm thực vật (FS) và động vật (JCK) có thể thay thế hoàn toàn bột cá (FM) trong khẩu phần ăn của tôm mà không ảnh hưởng đến năng suất. Tôm tăng trưởng tốt khi được cho ăn khẩu phần ăn chất lượng cao. Tỷ lệ sống cao cho thấy sức khỏe tốt của tôm và khẩu phần ăn đầy đủ dinh dưỡng. Nhìn chung, không có dấu hiệu nào cho thấy tôm kén ăn hoặc thức ăn kém ngon miệng, điều này được xác định bằng quan sát trực quan.

Hỗn hợp FS/JCK chưa được sử dụng trong thức ăn thủy sản trước đây. Tương tự nghiên cứu này, Gallardo cộng sự (2012) đã cung cấp FS, bột thải từ cá và sự kết hợp FS với SBM cho tôm thẻ chân trắng và kết luận rằng FS duy trì mức tăng cân hợp lý khi kết hợp với SBM trong khẩu phần ăn thực tế 35% CP. Tôm đạt được mức tăng trọng trung bình (3,5±0,1 g) tương tự như mức đạt được trong ao nuôi (3,47±0,16 g), nuôi tôm lớn hơn (trọng lượng ban đầu 1,9±0,03 g) trong bể. Qua đó, kết quả tăng trưởng tổng thể cho thấy rằng hỗn hợp khẩu phần ăn 18,75%FS/39,75%JCK có thể được sử dụng để thay thế hoàn toàn FM làm nguồn protein trong khẩu phần ăn cho L. vannamei, vì nó không làm giảm hiệu suất tăng trưởng của tôm trong cả phòng thí nghiệm và điều kiện nuôi ao.

SGR trong thí nghiệm trong phòng thí nghiệm tương tự như Davis và Arnold (2000) nhưng thấp hơn Suárez và cộng sự (2009). Sự khác biệt có thể do thành phần thức ăn, tuổi tôm, điều kiện nuôi và thời gian thử nghiệm. Khẩu phần ăn 18,75%FS/39,75%JCK có hàm lượng axit amin đáp ứng nhu cầu của tôm theo Tacon et al. (1999), Fox et al. (2010) và Nunes et al. (2014). Tăng trưởng tốt và tỷ lệ sống cao ở cả điều kiện phòng thí nghiệm và ao. Methionine và lysine là những axit amin hạn chế đầu tiên khi sử dụng phụ phẩm thực vật và động vật trong khẩu phần ăn của cá và tôm. Khẩu phần 18,75% FS/39,75% JCK đáp ứng nhu cầu methionine và lysine của tôm (NRC, 2011). Tốc độ tăng trưởng hàng ngày tương tự như Amaya et al. (2007), Davis et al. (2004), Furtado et al. (2011) và Krummenauer et al. (2011) nhưng kém hơn điều kiện đầy đủ của L. vannamei trong điều kiện ngoài trời (Tacon et al., 2002). Sự khác biệt có thể do kích thước ban đầu của tôm, hệ thống nuôi và nguồn protein. Thành phần axit amin của FS từ cá rô phi không ảnh hưởng đến hiệu suất tăng trưởng của tôm. Mặc dù FS được sử dụng trong các thí nghiệm của chúng tôi được chế biến từ cá nước ngọt (cặn cá rô phi từ phi lê), nhưng có vẻ như hiệu suất tăng trưởng chung của tôm thẻ chân trắng được nuôi ở độ mặn cao (35-38 PSU) trong cả hai thử nghiệm không bị ảnh hưởng bởi thành phần và nguồn gốc axit amin, kết luận rằng FS từ việc phi lê phế liệu cá rô phi kết hợp với bột JCK là một hỗn hợp các thành phần dinh dưỡng có lợi cho tôm thẻ L. vannamei.

Khả năng tôm sử dụng khẩu phần ăn có hàm lượng FM thấp trong hệ thống nước sạch khác rất nhiều so với khẩu phần ăn được thực hiện trong ao (D’Abramo và Castell, 1997). Dữ liệu thu được từ hệ thống nước sạch cần được xác nhận trong điều kiện ao nuôi. Lồng lưới là công cụ hữu ích để kiểm tra hiệu suất thức ăn trong điều kiện ao nuôi. Nghiên cứu này sử dụng lồng lưới để đánh giá hiệu quả của các khẩu phần ăn khác nhau. Kết quả cho thấy tôm được cho ăn khẩu phần 18,75%FS/39,75%JCK và RD có tốc độ tăng trưởng cao nhất (0,1 g/ngày) trong cả điều kiện phòng thí nghiệm và ao nuôi. Khả năng sử dụng thức ăn tự nhiên có thể góp phần vào kết quả tăng trưởng. Tuy nhiên, tác động của thức ăn tự nhiên và sinh vật phù du cần được nghiên cứu thêm. Mối tương quan giữa việc bổ sung các nguồn protein thay thế được sử dụng và trọng lượng tôm cho thấy rằng khẩu phần ăn kết hợp các bữa ăn FS và JCK ở mức trung bình tương ứng là 28,49/33,11%, có thể thay thế hoàn toàn FM mà không ảnh hưởng đến hiệu suất tăng trưởng của tôm.

Kết luận

Sự kết hợp giữa 18,75% thức ăn ủ chua cá/39,75% bột hạt Jathropa curcas làm nguồn protein là một giải pháp thay thế tiềm năng để thay thế hiệu quả bột cá trong khẩu phần ăn thực tế cho L. vannamei. Điều này xảy ra ở các độ tuổi được nghiên cứu trong cả điều kiện phòng thí nghiệm và ao nuôi với khẩu phần ăn duy trì hiệu suất tăng trưởng tôm hợp lý.

Theo Hervey Rodríguez-González, Martín R. López-Aguilar, Jorge Fonseca-Madrigal, Carlos A. Martínez-Palacios, Manuel García-Ulloa

Nguồn: https://www.academia.edu/103405085/Use_of_a_mixture_of_vegetal_Jatropha_curcas_and_animal_fish_silage_byproducts_as_protein_source_in_shrimp_Litopenaeus_vannamei_diets

Biên dịch: Nguyễn Thị Quyên – Tôm Giống Gia Hóa Bình Minh

TÔM GIỐNG GIA HÓA – CHÌA KHÓA THÀNH CÔNG

Xem thêm:

Kỹ Thuật Nuôi, Tin Tức