English
Tóm tắt
Mục đích của nghiên cứu này là so sánh hiệu suất của hai loài tảo cát Thalassiosira weissflogii và Chaetoceros gracilis trong nuôi ấu trùng tôm sú Penaeus monodon. Ấu trùng tôm được cho ăn bằng C. gracilis, T. weissflogii hoặc kết hợp hai loài tảo cát. Ấu trùng chỉ được nuôi bằng T. weissflogii hoặc kết hợp cả hai loại tảo cát có tỷ lệ sống sót cao hơn đáng kể và biến thái nhanh hơn so với những ấu trùng chỉ được nuôi bằng C. gracilis. Số lượng tế bào tảo cát được ấu trùng tiêu thụ trong khoảng thời gian 3 giờ đã được xác định, cho thấy ấu trùng tiêu thụ lượng C. gracilis cao hơn đáng kể so với T. weissflogii. Tuy nhiên, khi so sánh về hàm lượng protein, tổng axit béo và axit béo không bão hòa đa của hai loài tảo cát được phát hiện cao hơn đáng kể ở T. weissflogii. Việc chuyển đổi số lượng tế bào tảo cát được tiêu thụ thành lượng protein tương đương, tổng axit béo, axit eicosopentaenoic và axit desahexaenoic cho thấy ấu trùng được nuôi bằng T. weissflogii nhận được lượng chất dinh dưỡng cao hơn đáng kể so với ấu trùng ăn C. gracilis. Kết quả cho thấy lợi ích của việc cho C. gracilis ăn T. weissflogii trong việc tăng cường tỷ lệ sống và biến thái ở ấu trùng P. monodon.
Giới thiệu
Nuôi thương mại tôm sú Penaeus monodon là một ngành công nghiệp quan trọng ở nhiều nước nhiệt đới, và các chương trình nhân giống chọn lọc và thuần hóa đã cải thiện hiệu suất thương mại của loài này (Withyachumnarnkul và cộng sự, 2001). Nuôi ấu trùng P. monodon là bước đầu tiên trong quá trình nuôi trồng và cung cấp tôm post chất lượng cao, theo truyền thống thường được thực hiện trong các trại sản xuất giống thương mại sử dụng Chaetoceros spp., Skeletonema spp., và các loài tảo cát khác cho giai đoạn ấu trùng từ zoea 1 đến mysis 2 hoặc 3, và artemia hoặc các loại động vật phù du khác ở giai đoạn tôm post (Chu 1989; Zhang và Richmond 2003). Rất ít thông tin được công bố liên quan đến các loại tảo cát thích hợp để nuôi ấu trùng P. monodon, có thể là do mức độ nghiên cứu học thuật trong lĩnh vực này còn thấp và tính nhạy cảm thương mại của loại thông tin này.
Chaetoceros gracilis đã được sử dụng thường xuyên trong nuôi ấu trùng tôm thẻ chân trắng Litopenaeus vannamei và tôm càng xanh Penaeus stylirostris (Simon 1978). Trong nỗ lực tìm kiếm loại tảo cát tốt hơn loài C. gracilis thường được sử dụng để nuôi ấu trùng tôm Kuruma Penaeus japonicus, Okauchi và Tokuda (2003) đã báo cáo rằng ấu trùng được nuôi bằng hỗn hợp Phaeodactylum tricornutum và C. gracilis hoạt động tốt hơn về mặt biến thái và tỷ lệ sống cao hơn so với những loài chỉ được nuôi bằng tảo cát. Các tác giả cho rằng hiệu quả cải thiện của việc cho ăn hỗn hợp có thể là do hàm lượng axit eicosopentaenoic (EPA), protein thô và tổng lipid trong Ph. tricornutum tương đối cao hơn.
Một loài tảo cát khác được sử dụng trong nuôi ấu trùng cá và tôm là Thalassiosira weissflogii (Fryxell và Hasle 1977), mặc dù không tìm thấy báo cáo nào về việc sử dụng trong nuôi ấu trùng P. monodon. Loại tảo cát này chứa hàm lượng cao các axit béo không bão hòa đa (PUFA), chẳng hạn như axit eicosopentaenoic (EPA, C20:5n-3) và axit desahexaenoic (DHA, C22:6n-3) (Pratoomyot và cộng sự, 2005), do đó nó trở thành ứng cử viên tiềm năng cho nuôi ấu trùng. Để kiểm tra giả thuyết này, cả hai loài tảo cát đều được sử dụng trong nuôi ấu trùng P. monodon cho nghiên cứu này dưới dạng nuôi cấy từng loại tảo cát hoặc dưới dạng thức ăn tảo cát hỗn hợp. Tỷ lệ sống và tăng trưởng của ấu trùng (biến thái) được so sánh giữa các nghiệm thức và phân tích dinh dưỡng của cả hai loài tảo cát cũng được thực hiện.
Nguyên liệu và phương pháp
Nuôi cấy tảo cát
Các loài T. weissflogii (7–10 µm) và C. gracilis (3–5 µm), được xác nhận bằng quan sát hình thái và trình tự DNA sử dụng phản ứng chuỗi polymerase được khuếch đại bởi các đoạn mồi cụ thể (Senapin và cộng sự, đã gửi bản thảo), được nuôi cấy ở môi trường F/2 từ nuôi cấy axenic đến 250 ml trong bình đáy phẳng ở 28℃ sử dụng 30 g/l nước biển có độ mặn và ánh sáng 24 giờ ở cường độ 100 µE/m2/s. Sau đó, chúng được nuôi cấy tiếp trong chai 2l sử dụng môi trường EPIZYM®-Algae Growth Media Complete, hoặc AGP, (Epicore BioNetworks Inc., Mount Holly, NJ, USA), tiếp theo là túi nuôi cấy 30l, thùng nhựa 500l, và cuối cùng là bể bê tông nặng 10 tấn, mỗi loại tảo cát có 3 bể. Sau 2 ngày trong bể bê tông 10 tấn, mật độ tế bào của tảo cát đã đạt ~106 tế bào/ ml và đang ở pha tĩnh, tại thời điểm đó tảo cát được thu hoạch bằng cách cho nuôi cấy qua lưới lọc nylon 16µm (các tế bào tảo nhanh chóng làm tắc bộ lọc nên có đủ đường dẫn chất lỏng nhưng không cho các tế bào tảo đi qua), và các tế bào cô đặc được bảo quản ở nhiệt độ 4℃ cho đến khi được phân tích về giá trị dinh dưỡng và làm thức ăn cho ấu trùng tôm. Để đảm bảo đạt được môi trường nuôi cấy C. gracilis và T. weissflogii thuần khiết, cần hết sức cẩn thận khi lấy mẫu thường xuyên và xác định các loài tảo cát dưới kính hiển vi ánh sáng trong mỗi bước nuôi cấy.
Phân tích dinh dưỡng của tảo cát
Việc chiết xuất protein từ tảo cát được thực hiện theo Janknegt và cộng sự, (2007) và được phân tích bằng phương pháp Coomassie blue (Bradford 1976). Tóm lại, 50 ml tảo cát (5 x 106 tế bào/ ml) được ly tâm và sau đó viên được huyền phù lại trong dung dịch đệm 1,5 ml chứa 50 mM KH2PO4 pH 7.8, 0.1 mM EDTA và 1% Triton-X 100 và được siêu âm. Hỗn hợp này sau đó được ly tâm ở mức 20.000 x g trong 20 phút ở 4℃ và 150 lít chất nổi phía trên được sử dụng để đo hàm lượng protein. Hàm lượng protein trong mẫu tảo cát được biểu thị bằng phần trăm trọng lượng khô và được chia cho tổng số tế bào trong mẫu, dưới dạng ng/ tế bào. Thử nghiệm được thực hiện trên ba mẫu riêng biệt cho từng loài tảo cát, mỗi mẫu có nguồn gốc từ một bể nuôi 10 tấn khác nhau.
Phân tích axit béo được thực hiện theo phương pháp được mô tả bởi Lepage và Roy (1986). Tóm lại, 50 ml môi trường nuôi cấy tảo cát được ly tâm ở tốc độ 1.500 x g trong 5 phút ở 4℃ và đông khô chân không ở 4℃. Tổng lipid được chiết xuất từ 100 mg mẫu đông khô. Một lượng axit heptadecanoic đã biết (C17:0) được sử dụng làm chất chuẩn nội. Phân tích sắc ký khí được thực hiện bằng cột diethylene glycol succinate 15% (3 m x 3 mm) ở đầu dò ion hóa ngọn lửa 190℃, với nhiệt độ kim phun và máy dò ở 220℃ và được tích hợp với bộ tích hợp Shimadzu CR-3A. Tổng lipid trong mẫu tảo cát được biểu thị bằng phần trăm trọng lượng khô và chia cho số lượng tế bào trong mẫu, dưới dạng ng/ tế bào.
Cấu hình axit béo được xác định bằng cách so sánh các đỉnh của chúng với đỉnh của chất chuẩn nội, sử dụng heli làm khí mang ở tốc độ 1,3 ml/phút. Các metyl este của axit béo được xác định bằng cách so sánh với các hỗn hợp tiêu chuẩn đã biết [PUFA No. 1 (nguồn hàng hải) 47033, Supelco, USA] và định lượng theo khu vực để ước tính phần trăm tổng lượng axit béo. Các axit béo được chia thành ba loại chính: axit béo bão hòa (SFA), axit béo bão hòa đơn (MUFA) và axit béo không bão hòa đa (PUFA). Các vật liệu tham chiếu đã biết, PUFA No. 3 (dầu Menhaden), được xác định và tính toán để so sánh với các kết quả. Hàm lượng EPA và DHA cũng được tính theo pg/ tế bào của mỗi tảo cát.
Thử nghiệm nuôi ấu trùng
Ấu trùng P. monodon từ giai đoạn nauplii đến PL 1, được nở ra từ trứng của một con tôm cái được nuôi tại Trung tâm Cải thiện Di truyền Tôm (SGIC), Quận Chaiya, Surat Thani. Trung tâm này là cơ sở được chính phủ hỗ trợ, được điều hành bởi Trung tâm Kỹ thuật Di truyền và Công nghệ sinh học Quốc gia (BIOTEC), Cơ quan Phát triển Khoa học và Công nghệ Quốc gia (NSTDA), thuộc Bộ Khoa học và Công nghệ Thái Lan. Ấu trùng và tôm post được sản xuất từ tôm bố mẹ gia hóa không có mầm bệnh đặc hiệu (SPF) được duy trì theo chương trình nhân giống chọn lọc (Withyachumnarnkul và cộng sự, 2001). Lý do sử dụng ấu trùng từ một con cái là để có một quần thể mẫu đồng nhất, nhằm tránh mọi phản ứng khác nhau bằng cách sử dụng các nhóm ấu trùng khác nhau.
Ấu trùng được nuôi trong bể nhựa hình tròn 500 l chứa 250 l nước biển với mật độ 50.000 ấu trùng mỗi bể (200 nauplii/ l). Nước biển được lọc qua túi lọc 0,5 µm, sau khi xử lý bằng ozone và xử lý bằng tia UV. Nhiệt độ nước được duy trì ở mức 29–31℃ bằng bộ sưởi bức xạ đặt phía trên bể và đủ lượng oxy hòa tan (5–8 ppm) được cung cấp bằng hệ thống khuếch tán không khí bằng đá khí. Ấu trùng được chia thành 3 nghiệm thức, với 7 lần lặp lại cho mỗi nhóm: nhóm chỉ được nuôi bằng C. gracilis ở mật độ 105 tế bào/ ml (là mật độ cuối cùng trong bể nuôi); chỉ có T. weissflogii (5 x 104 tế bào/ ml); và sự kết hợp của C. gracilis (7 x 104 tế bào/ ml) và T. weissflogii (3 x 104 tế bào/ ml). Trong phương pháp thông thường tại SGIC, tảo cát được cung cấp cho ấu trùng P. monodon với mật độ từ 50.000 đến 100.000 tế bào/ ml, để đảm bảo lượng tảo cát dồi dào cho tôm (200.000–400.000 tế bào tảo cát/ấu trùng), và tảo cát được bổ sung 2 lần/ ngày vào lúc 10 giờ và 22 giờ để duy trì mức mật độ này. Các giai đoạn của ấu trùng được xác định cứ sau 3 giờ trong tổng số 9–10 ngày nuôi. Khi 80% ấu trùng trở lên đạt đến một giai đoạn cụ thể (như giai đoạn zoea 1, 2, 3, mysis 1, 2, 3 hoặc PL 1), mật độ ấu trùng ở mỗi giai đoạn cụ thể đã được xác định. Mật độ trong từng giai đoạn được so sánh với mật độ ban đầu của ấu trùng khi thả vào lúc đầu và tỷ lệ sống của từng giai đoạn ấu trùng có thể được tính toán trực tiếp. Trong quá trình nuôi, tổng nitơ amoniac, tổng nitrit, độ mặn và tổng độ kiềm được theo dõi chặt chẽ và duy trì ở mức tối ưu bằng cách thay 30% lượng nước trên tổng thể tích.
Trong giai đoạn zoea 1 đến PL 1, tôm được cho ăn tảo cát như trên trong tổng thời gian 8–10 ngày, và giai đoạn mysis 3 và PL 1 được cho ăn bổ sung lần lượt bằng artemia nấu chín và artemia sống ở giai đoạn 1. Mật độ tảo cát được kiểm tra trong tất cả các bể 2 lần/ ngày bằng máy đo huyết áp và kính hiển vi ánh sáng và được duy trì ở mức xử lý bằng cách bổ sung thêm tảo cát vào bể để thay thế lượng tảo cát đã bị ấu trùng tiêu thụ.
Tốc độ biến thái của mỗi nghiệm thức được xác định bằng cách đếm 100 mẫu trong cốc 600 ml vào ngày thứ 10 của thí nghiệm và sau đó quan sát tỷ lệ phần trăm ấu trùng và giai đoạn PL 1 trong mẫu bằng kính hiển vi soi nổi. Để tránh sai số lấy mẫu do PL 1 có xu hướng tập trung ở đáy bể, nên khuấy nước trong bể nuôi bằng thanh gỗ dài trước khi lấy mẫu.
Các loài tảo cát ưa thích của ấu trùng tôm
Trong một thí nghiệm riêng biệt, 500 ấu trùng P. monodon được thả vào mỗi bể trong số 5 bể nhựa tròn 10 lít chứa 5 lít nước biển với chất lượng và điều kiện tương tự như trong thí nghiệm trước. Ấu trùng được nuôi trong 10 ngày và được cho ăn bằng hỗn hợp C. gracilis, 5 x 104 tế bào/ ml và T. weissflogii, 5 x 104 tế bào/ ml. Tổng mật độ của tảo cát là 105 tế bào/ ml, cũng là số lượng dồi dào cho tôm tiêu thụ (106 tế bào tảo cát/ ấu trùng). Mật độ tảo cát trong mỗi bể được xác định 2 lần/ ngày bằng máy đo huyết cầu dưới kính hiển vi ánh sáng và được duy trì ở mức ban đầu bằng cách thêm từng loại tảo cát vào bể theo yêu cầu. Các giai đoạn ấu trùng được xác định cứ sau 3 giờ như trong phương pháp ấp trứng thông thường và khi trên 80% ấu trùng phát triển thành các giai đoạn zoea 1, 2 và 3, và mysis 1, 2 và 3, mật độ của cả hai loài tảo cát được xác định và ghi lại ở mức thời gian 0 giờ. Sau 3 giờ, mật độ tảo cát được đo lại và sự khác biệt giữa số lượng tế bào của mỗi loài được lấy tại thời điểm 0 và 3 giờ là số lượng tế bào tảo cát được ấu trùng của giai đoạn tương ứng tiêu thụ trong thời gian đó. Bằng cách chia số lượng tế bào tảo cát cho số lượng tôm trong bể, số lượng tế bào tảo cát được ấu trùng ăn trong 3 giờ đã được xác định. Nhân lượng protein, tổng axit béo, EPA và DHA đã xác định trước đó trên mỗi tế bào của T. weissflogii và C. gracilis với số lượng tế bào của từng loại được tiêu thụ, tổng lượng chất dinh dưỡng tiêu thụ trên mỗi ấu trùng trong 3 giờ cũng được tính toán.
Phân tích thống kê
Tất cả các giá trị được thể hiện dưới dạng phương tiện ± SD. Phân tích thống kê được thực hiện thông qua phần mềm SPSS phiên bản 17.0 bằng phân tích ANOVA một chiều và Tukey post-hoc.
Kết quả
Giá trị dinh dưỡng của tảo cát
C. gracilis có hàm lượng protein (1,49) và tổng axit béo (2,19) trên trọng lượng khô cao hơn đáng kể so với T. weissflogii (Bảng 1a). Tuy nhiên, khi các giá trị được biểu thị theo từng tế bào, T. weissflogii chứa protein (8,09) và tổng lượng axit béo (2,59) cao hơn đáng kể so với C. gracilis (Bảng 1b). Mức độ trên mỗi tế bào của cả EPA và DHA đều cao nhất ở T. weissflogii, mức EPA và DHA trên mỗi tế bào ở T. weissflogii lần lượt cao hơn tới 69 và 159 so với C. gracilis.
Về thành phần axit béo, T. weissflogii có tỷ lệ PUFA cao hơn MUFA và SFAs, trong khi C. gracilis chứa tỷ lệ MUFA cao hơn (Bảng 1c–e). T. weissflogii chứa tỷ lệ phần trăm EPA và DHA cao hơn và tỷ lệ LA thấp hơn khi so sánh với C. gracilis.
Bảng 1. Giá trị dinh dưỡng của Thalassiosira weissflogii và Chaetoceros gracilis
Axit LA Linoleic, axit GLA c-linolenic, axit ALA a-linolenic, axit AA arachidonic, axit eicosopentaenoic EPA, axit DHA desahexaenoic
* Khác biệt có ý nghĩa ở mức P<0,01
Hiệu suất nuôi trồng thủy sản
Trong cả 3 khẩu phần ăn, tỷ lệ sống của tôm giảm rõ rệt từ giai đoạn Z1 đến Z3, với tỷ lệ chết cao nhất ở nhóm chỉ được nuôi bằng C. gracilis. Tỷ lệ sống của tôm tương đối tốt sau giai đoạn Z3 ở tất cả các nhóm. Vào cuối thí nghiệm (ngày 10), tỷ lệ sống chung ở các nhóm được nuôi bằng T. weissflogii và thức ăn kết hợp là khoảng 70%, trong khi tỷ lệ sống ở nhóm chỉ được nuôi bằng C. gracilis là <30% (Hình 1).
Hình 1. Tỷ lệ sống chung của ấu trùng Penaeus monodon ở các giai đoạn phát triển khác nhau khi được cho ăn các loại tảo cát khác nhau. Giai đoạn Z Zoea, giai đoạn M Mysis, giai đoạn tôm post PL. N = 7. * P<0,01, so với tỷ lệ sống ở các giai đoạn phát triển tương ứng khi chỉ cho ăn Thalassiosira weissflogii hoặc kết hợp T. weissflogii và Chaetoceros gracilis
Tỷ lệ biến thái ở 3 nghiệm thức khẩu phần ăn cho thấy ấu trùng tôm chỉ được nuôi bằng C. gacilis có tốc độ phát triển chậm hơn (Bảng 2). Gần 100% ấu trùng chỉ được cho ăn T. weissflogii hoặc T. weissflogii và C. gracilis kết hợp đạt đến giai đoạn tôm post 1 (PL 1) vào ngày thứ 10, nhưng trong nhóm chỉ cho ăn C. gracilis chỉ có khoảng 55% đạt giai đoạn PL 1.
Bảng 2. Tỷ lệ phần trăm giai đoạn ấu trùng và tôm post (ngày 10) ở tôm sú Penaeus monodon được nuôi bằng Thalassiosira weissflogii, Chaetoceros gracilis, hoặc kết hợp cả hai
M Mysis, tôm post PL
Trong cột PL 1, chỉ số trên khác nhau biểu thị ý nghĩa thống kê P<0,01, N = 7
Các loài tảo cát ưa thích của tôm
Ấu trùng P. monodon ăn lượng C. gracilis nhiều hơn T. weissflogii khi cả 2 loài tảo cát được cho ấu trùng ăn với cùng số lượng tế bào tảo (Hình 2). Số lượng tế bào của mỗi loài tảo được ấu trùng tiêu thụ trong khoảng thời gian 3 giờ tương đương nhau trong giai đoạn Z1 đến Z3, nhưng ở giai đoạn M1 đến M3, số lượng C. gracilis được tôm tiêu thụ cao hơn đáng kể. Khi số lượng tế bào của mỗi tảo cát được chuyển đổi thành protein và tổng axit béo, kết quả cho thấy rằng T. weissflogii cung cấp lượng lớn cả hai chất dinh dưỡng này (Hình 3). Tương tự, lượng EPA và DHA do T. weissflogii cung cấp cũng cao hơn đáng kể so với lượng do C. gracilis cung cấp (Hình 4).
Hình 2. Số lượng tế bào tảo cát được một ấu trùng Penaeus monodon ở các giai đoạn phát triển khác nhau tiêu thụ trong 3 giờ. Giai đoạn Z Zoea, giai đoạn M mysis. N = 5 cho mỗi biểu đồ. * P<0,05 và ** P<0,01, so với các giá trị tương ứng của Thalassiosira weissflogii
Hình 3. Protein (a) và tổng axit béo (b) được một ấu trùng Penaeus monodon ở các giai đoạn phát triển khác nhau tiêu thụ trong 3 giờ, khi cung cấp hỗn hợp Chaetoceros gracilis và Thalassiosira weissflogii. Giai đoạn Z Zoea, giai đoạn M Mysis. N = 5 cho mỗi biểu đồ. * P<0,05 và ** P<0,01, so với các giá trị tương ứng của C. gracilis.
Hình 4. Axit Eicosapentaenoic (a) và axit desahexaenoic (b) được một ấu trùng Penaeus monodon ở các giai đoạn phát triển khác nhau tiêu thụ trong 3 giờ, khi cung cấp hỗn hợp Chaetoceros gracilis và Thalassiosira weissflogii. Giai đoạn Z Zoea, giai đoạn M Mysis. N = 5 cho mỗi biểu đồ. * P<0,05 và ** P<0,01, so với các giá trị tương ứng của C. gracilis.
Thảo luận
Giá trị dinh dưỡng của tảo cát
Trên mỗi tế bào, cả hàm lượng protein và tổng axit béo của T. weissflogii đều cao hơn đáng kể so với C. gracilis. Hàm lượng dinh dưỡng trên mỗi tế bào cao hơn có thể là do T. weissflogii có kích thước tế bào trung bình lớn hơn C. gracilis. Kích thước của tế bào T. weissflogii là 7–15 µm (Fryxell và Hasle 1977; Logan và cộng sự 1994; Harris và cộng sự 1995), trong khi kích thước của tế bào C. gracilis là 3–10 µm (Logan và cộng sự 1994; Okauchi và cộng sự 1997). Tobias-Qunitio và Villegas (1982) đã báo cáo rằng giai đoạn Z1 của P. monodon có khả năng ăn các hạt thức ăn có kích thước từ 4–5 µm, nhưng nghiên cứu này đã chỉ ra rằng ấu trùng cũng có thể ăn tảo cát có kích thước lớn hơn. Trong nghiên cứu này, các giai đoạn Z1–Z3 tiêu thụ số lượng T. weissflogii và C. gracilis bằng nhau, trong khi các giai đoạn sau tiêu thụ tương đối nhiều C. gracilis hơn. Có thể dự đoán rằng T. weissflogii ở các giai đoạn ấu trùng sau này sẽ ưa thích hơn vì kích cỡ miệng tôm lớn hơn khi tôm lớn lên như ở giai đoạn mysis; nhưng điều này đã được tìm thấy không phải là trường hợp. Có thể xu hướng của C. gracilis hướng tới sự kết tụ tảo cát trong đó các khối tế bào được hình thành, làm cho loài tảo này dễ dàng bám vào và tiêu thụ hơn so với loài T. weissflogii không có xu hướng kết tụ (Knuckey và cộng sự, 2006), dẫn đến số lượng tế bào C. gracilis bị ấu trùng mysis tiêu thụ cao hơn.
Thành phần axit béo tảo cát được nghiên cứu là điển hình của tảo cát (Dunstan và cộng sự 1994), bao gồm năm axit béo chính là 14:0, 16:0, 16:1n7, 16:3n4 và 20:5n3. Cấu hình này có thể thay đổi theo giai đoạn phát triển của tảo cát; nói chung, tỷ lệ phần trăm PUFA tăng dần từ pha log sang pha tĩnh, trong khi tỷ lệ phần trăm MUFA giảm dần (Zhukova 2004). Điều này có nghĩa là PUFA ở mức cao nhất trong giai đoạn đầu pha tĩnh khi các tế bào được thu hoạch để nuôi ấu trùng trong nghiên cứu này. Vì hầu hết PUFA đều có trong phospholipid, mức độ cao này có thể có lợi cho sự tăng trưởng và sức khỏe của tôm, và đóng vai trò quan trọng trong sự hình thành màng và phân chia tế bào (Zhukova 2004).
Tỷ lệ EPA trong T. weissflogii được tìm thấy trong nghiên cứu này gấp khoảng 2 lần so với báo cáo của Ishida và cộng sự (2000), trong khi đó DHA có thể so sánh được. Trong nghiên cứu của họ, EPA và DHA lần lượt nằm trong khoảng 10–14% và 2–5%, so với ~23 và ~5% trong nghiên cứu này. Tuy nhiên, mức EPA và DHA trên mỗi tế bào tương đương với mức của Ishida và cộng sự (2000). Tổng lượng axit béo ở T. weissflogii trong nghiên cứu này (45,7 pg/ tế bào) cũng cao hơn nhiều so với nghiên cứu của họ (1,2 pg/ tế bào). Sự khác biệt này có thể là do sự khác biệt trong các phương pháp được sử dụng trong mỗi nghiên cứu, chẳng hạn như thời điểm thu hoạch, môi trường được sử dụng, phơi nhiễm sáng:tối, và những khác biệt khác, như đã được báo cáo là trường hợp của T. pseudonana (Brown và cộng sự, 1996) và các loài tảo cát khác (Arau’jo và Garcia 2002; McGinnis và cộng sự 1997; Renaud và cộng sự 2002; Simental và Sa’nchez-Saavedra 2003). Thành phần axit béo của C. gracilis được xác định trong nghiên cứu này gần giống với kết quả của các nhà nghiên cứu khác (Okauchi và cộng sự, 1997).
Hiệu suất tăng cao khi ấu trùng Penaeus monodon ăn Thalassiosira weissflogii
Tỷ lệ sống của ấu trùng P. monodon giảm rõ rệt giữa giai đoạn Z1 và Z3 trong tất cả các khẩu phần ăn, nhưng số lượng giảm nhanh hơn ở nhóm chỉ được cho ăn C. gracilis. Phát hiện này tương tự với phát hiện được báo cáo ở ấu trùng tôm thẻ chân trắng L. vannamei (Palacios và cộng sự, 2001). Tỷ lệ sống giảm mạnh trong giai đoạn đầu phát triển của ấu trùng có lẽ là do trứng tôm không đủ chất dinh dưỡng vì ấu trùng ở giai đoạn lecitotrophic sớm phụ thuộc vào chất dinh dưỡng từ trứng để tồn tại (Palacios và cộng sự, 2001). Mặc dù điều này cho thấy rằng tình trạng dinh dưỡng của tôm bố mẹ gia hóa tại Trung tâm Cải thiện Di truyền Tôm không ở mức tối ưu, nhưng thực tế là tất cả trứng được sử dụng cho nghiên cứu này đều đến từ cùng một con cái trong một lần sinh sản duy nhất đã loại bỏ điều này như một nguyên nhân tiềm tàng của sự khác biệt về tỷ lệ sống giữa các nghiệm thức. Do đó, sự khác biệt về tỷ lệ sống là do các yếu tố trong quá trình nuôi, đặc biệt là dinh dưỡng được cung cấp từ thức ăn tảo cát.
Ấu trùng P. monodon chỉ được nuôi bằng T. weissflogii hoặc sự kết hợp của T. weissflogii và C. gracilis có tỷ lệ sống và biến thái cao hơn đáng kể so với ấu trùng chỉ được nuôi bằng C. gracilis, điều này cho thấy rằng T. weissflogii phù hợp hơn C. gracilis để nuôi ấu trùng P. monodon. Phát hiện này phù hợp với phát hiện của Emmerson (1980) đã báo cáo tỷ lệ sống 96% của PL1 ở Penaeus indicus khi cho ăn T. weissflogii trong giai đoạn zoea. Tuy nhiên, các nhà nghiên cứu khác cho rằng hỗn hợp tảo cát như Isochrysis sp. và C. gracilis tốt hơn so với việc cho ăn một loài tảo cát đơn lẻ như Metapenaeus ensis (Okauchi và cộng sự, 1997). Okauchi và Tokuda (2003) cũng khuyến nghị cho ấu trùng P. japonicus ăn hỗn hợp tảo cát Phaeodactylum tricornutum và C. gracilis. Hỗn hợp tảo cát có thể cung cấp các thành phần dinh dưỡng cao hơn và đa dạng hơn so với loài tảo cát đơn lẻ (Laing và cộng sự, 2004). Tuy nhiên, kết quả từ nghiên cứu này chỉ ra rằng ấu trùng chỉ được nuôi bằng T. weissflogii có năng suất tương đương với những ấu trùng được cho ăn kết hợp T. weissflogii và C. gracilis; do đó, chỉ riêng T. weissflogii có thể chứa tất cả các chất dinh dưỡng cần thiết cho ấu trùng cũng như cho sự sinh trưởng và phát triển của chúng.
Vì động vật máu lạnh phụ thuộc vào PUFA để tăng trưởng và trao đổi chất (Glencross và cộng sự 2002), hàm lượng PUFA cao được tìm thấy ở T. weissflogii cũng có thể góp phần giúp nuôi ấu trùng thành công. Palacios và cộng sự (2001) phát hiện ra rằng một số thành phần lipid cụ thể trong trứng có thể được sử dụng làm chỉ số dự đoán về chất lượng ấu trùng và cho thấy rằng EPA đóng góp nhiều hơn so với DHA trong việc hỗ trợ tỷ lệ sống và biến thái của ấu trùng L. vannamei. Một số nghiên cứu cho thấy vai trò của DHA trong quá trình tạo phôi và phát triển ấu trùng sớm ở P. monodon (Millamena 1989; Xu và cộng sự, 1994; Cahu và cộng sự, 1994); vì vậy tỷ lệ sống cao của ấu trùng P. monodon được nuôi bằng T. weissflogii trong nghiên cứu này có thể là do hàm lượng DHA cao hơn trong loại tảo cát này.
Kết quả từ nghiên cứu này cho thấy ấu trùng P. monodon được nuôi bằng T. weissflogii nhận được nhiều protein và lipid hơn so với những ấu trùng chỉ được nuôi bằng C. gracilis, chủ yếu là do kích thước của T. weissflogii lớn hơn. Sự khác biệt về hấp thu chất dinh dưỡng giữa hai khẩu phần ăn có thể góp phần tạo ra sự khác biệt về tỷ lệ sống và biến thái của tôm.
Theo Pauline Kiatmetha, Wipawan Siangdang, Boosya Bunnag, Saengchan Senapin, Boonsirm Withyachumnarnkul
Biên dịch: Nguyễn Thị Quyên – Tôm Giống Gia Hóa Bình Minh
TÔM GIỐNG GIA HÓA – CHÌA KHÓA THÀNH CÔNG
Xem thêm:
- Shrimp II: Thức Ăn Và Quản Lý
- Shrimp III: Dịch Bệnh Và Lợi Nhuận
- Ảnh Hưởng Của Nguồn Protein Đơn Bào Đến Tăng Trưởng Và Sức Khỏe Của Tôm Thẻ Chân Trắng